Специализированное научно-практическое издания для ветеринарных врачей и студентов ветеринарных ВУЗов.

Veterinary Surgery: Small Animal (2012). By Karen M. Tobias, DVM, MS, DACVS and Spencer A. Johnston, VMD, DACVS.
Перевод и редакция Шилова П. С., ветеринарного врача-хирурга Ветеринарной клиники ортопедии, травматологии и интенсивной терапии, г. Санкт-Петербург.

Окончание. Начало в № 1/2016, № 2/2016

Список сокращений: ПАГ – перинеальные грыжи; ТД – тазовая диафрагма; ТВЗМ (IOMT) – транспозиция внутренней запирательной мышцы; ТПЯМ (SGMT) – транспозиция поверхностной ягодичной мышцы; ТПМ (SMT) – транспозиция полусухожильной мышцы.

Цистопексия

Целью цистопексии является фиксация в правильном анатомическом положении мочевого пузыря, что предотвращает ретрофлексию последнего. Как правило, использование этой техники для лечения собак с ПАГ и ретрофлексией мочевого пузыря остается спорной [16, 50, 53, 62, 83]. Цистопексия может быть выполнена между правой латеральной абдоминальной стенкой и правой стенкой шейки мочевого пузыря. Делаются насечки около 1–2 см на брюшной стенке и серозной оболочке стенки мочевого пузыря. Два или три прерывных шва из рассасывающейся мононити (3-0 PDX) размещаются между поперечной мышцей брюшной стенки, брюшиной и серозно-мышечным слоем мочевого пузыря [50]. Автор также успешно использовал технику размещения 4–5 нерассасывающихся нитей (3-0 Prolene) между серозно-мышечным слоем на верхушке мочевого пузыря и правой боковой стенкой без скарификации. Цистопексия дополнительно используется при лечении дизурии, вторичной после каудально смещенного мочевого пузыря вследствие двусторонней грыжи [84].

Вазопексия

Техника вазопексии переносит увеличенную предстательную железу и мочевой пузырь от входа в тазовый канал в более краниальное положение в брюшной полости [53]. Перед вазопексией интактных кобелей кастрируют открытой техникой, семенные артерии и вены перевязывают отдельно от протока. Выпавший мочевой пузырь должен быть возвращен в его нормальную позицию. Каждый семявыносящий проток, предварительно тщательно отделенный на уровне предстательной железы от семенниковой артерии и вены, перевязывается и отсекается. На конце со стороны пересечения располагают нить 3-0 Prolene. Мочевой пузырь опорожняют и на уровне верхушки мочевого пузыря в брюшной стенке под поперечными мышцами живота делают туннель в краниокаудальном направлении (1,5–2,5 см). Затем, используя изогнутый зажим «Москит», проток тянут в каудокраниальном направлении через туннель, после чего, развернув назад, сшивают 3–4 швами монофиламентной нити (3-0 PDX или Polypropylene) [50, 53]. Нить для манипулирования протоком после подшивания может быть извлечена. У мелких пород собак одновременно делают колонопексию (фиксируют протоки после колонопексии [53]). В исследовании 9 собак вазопексия была успешно использована в сочетании с перинеальной герниорафией (7) и как монометод (2). Все животные были клинически стабильны в среднем 14,7 месяцев после проведенного вмешательства [53]. Для лечения ПАГ была описана лапароскопическая вазопексия. В одном из исследований 4 из 6 собак, прооперированных данным методом, не имели клинических признаков в течение 8 месяцев после хирургии [85]. Вазопексия не препятствует ретрофлексии мочевого пузыря [46]. Наиболее частыми осложнениями после фиксаций с рецидивами или без них являются тенезмы, колит, пролапс прямой кишки, запор, лихорадка [50, 82].

Поэтапность

Некоторые авторы рекомендуют поэтапно оперировать пациентов с двусторонними или осложненными грыжами [46, 71]. Осложненными считаются ПАГ, которые периодически повторяются, или если имеется односторонняя грыжа со значительной дилатацией прямой кишки, параллельно с хирургическими заболеваниями предстательной железы или выпадением и перекрутом мочевого пузыря. Сперва производится лапаротомия с вправлением внутренних органов; колоно- и цистопексия. Кастрация также может быть проведена в это же время. Окончательная операция по поводу ПАГ планируется через 2–7 дней после первого хирургического вмешательства: этого времени достаточно для стабилизации пациента и снятия воспаления, связанного с грыжей. В результате уменьшения тканей грыжевого содержимого повреждение важных сосудисто-нервных структур менее вероятно.

Нечастые ПАГ

Хирургические методики, описанные выше, чаще используются для пациентов с каудолатеральной грыжей, при которой содержимое выступает между external anal sphincter, levator ani и IOM. Хирургические модификации также были описаны для больных с дорсальной, вентральной и седалищной грыжей. В случаях с седалищной ПАГ крестцово-бугорковая связка может быть подшита к coccygeus и levator ani muscle для закрытия дефекта, а также посредством использования различных модификаций традиционной герниорафии и ТВЗМ [86]. В случаях дорсальной ПАГ coccygeus muscle должна быть сшита с levator ani muscle. В случаях вентральной ПАГ новая промежность формируется за счет сшивания двух levator ani muscles. У самок эти мышцы прикрепляются к дорсальной стенке влагалища, что благоприятствует восстановлению. В качестве альтернативы ПАГ может быть закрыта перенесенной полусухожильной мышцей. Следует катетеризировать животных, чтобы избежать повреждения уретры во время препарирования и подшивания мышц.

Послеоперационный уход

Сразу после операции следует снять кисетный шов с ануса и провести ректальное исследование с целью прощупывания любых отклонений от нормы и подтверждения нормальной поддержки стенки прямой кишки. Антибиотики широкого спектра действия продолжают давать и в послеоперационном периоде. Диета и слабительные препараты помогут устранить напряжение, которое может привести к пролапсу прямой кишки или несостоятельности швов. До снятия швов животному надевают воротник.

Осложнения

Частота осложнений после ушивания ПАГ традиционным способом составила 28,6 % – 61 % [2, 16]; ТВЗМ – 19 % – 45 % [64]; ТПЯМ – 15 % – 58 % [6, 30, 61]. Осложнения включали раневую инфекцию и абсцедирование [75, 87], серому [75], кровоизлияния, анорексию, недержание кала, паралич седалищного нерва, чрезмерное напряжение, нарушение мочеиспускания, выпадение прямой кишки, свищи прямой кишки,перианальные фистулы, метеоризм, боль при дефекации и рецидивы ПАГ [2, 16, 4, 22, 26, 35, 54]. Встречаемость послеоперационной инфекции составила около 6,4 % – 45 % [2, 6, 11, 22, 46, 64, 75, 87]. Возможные причины включали чрезмерное рассечение тканей, кровоизлияния в месте проведенного вмешательства, загрязнение фекалиями, сдавливание тканей, проникновение швов в прямую кишку или параанальные железы.

Недержание кала

Одностороннее повреждение срамного нерва может привести к временному недержанию с реиннервацией анального сфинктера с противоположной стороны в течение нескольких недель [24]. Постоянное недержание кала может быть следствием двустороннего повреждения срамных нервов, каудальных нервов прямой кишки или наружного сфинктера заднего прохода (<15 %) [2, 8, 11, 16, 87]. Функциональная недостаточность анального сфинктера может возникнуть в результате растяжения мышц во время двустороннего оперативного вмешательства или из-за местного воспаления. Повреждение седалищного нерва Седалищный нерв может быть захвачен швом при использовании крестцово-бугорковой связки в процессе оперативного лечения ПАГ. Это относительно редкое осложнение (около 5 %).

Повреждение седалищного нерва проявляется сразу же после выхода животного из наркоза, после оперативного вмешательства. При повреждении седалищного нерва у пациентов проявляется чрезмерная боль или паралич [54]. Мешающие швы извлекают хирургическим путем через каудальный подход к бедру (это позволяет лучше визуализировать нерв и требует меньшего удаления швов). Редко, но все же возможна временная нейропраксия в положении животного стоя. Этого можно избежать путем подкладывания мягких валиков и удерживания конечностей в нужном положении.

Дисфункция мочевого пузыря

Атония мочевого пузыря может произойти после ретрофлексии его в грыжу, которая возникает в 18 % – 29 % случаев [2, 22, 47, 62]. Атония мочевого пузыря – это, скорее, результат длительного растяжения мышц мочевого пузыря, повреждения нервов и нарушения кровоснабжения [1]. Это может вызвать временное или постоянное недержание мочи [53], и может понадобиться отдавливание мочи или катетеризация до тех пор, пока функция мочевого пузыря не восстановится. В одном исследовании острая задержка мочи, связанная с атонией мочевого пузыря, была зарегистрирована в 15 % случаев (11 из 72 собак) и длилась в течение 3–4 дней [2]. В исследовании из 9 собак с ПАГ и ретрофлексией мочевого пузыря, получавших лечение любым способом герниорафии и вазопексией (n=7) или фиксацией только семенных канатиков, 8 собак восстановили удержание мочи в течение 2–3 недель после операции [53]. В другом исследовании 41 собаки с загибом мочевого пузыря и без него имели дисфункцию мочевого пузыря 37 %, необратимую – 17 % [46]. В одном отчете смертность была у 30 % животных с ретрофлексией мочевого пузыря [22]. В редких случаях некроз мочевого пузыря был связан с загибом мочевого пузыря и нарушением нервно-сосудистого питания. Клинические признаки часто являются вторичными по отношению к уроперитониту. Требуется выполнить лапаротомию с целью оценить степень некроза и произвести резекцию омертвевшего участка.

Тенезмы

Чрезмерное напряжение может возникать в результате послеоперационного воспаления и боли, тяжелой ректальной дилатации, напряжения после двусторонней операции илиразмещения шва через стенку прямой кишки. Ректальное исследование должно быть сделано немедленно после ушивания грыжевых ворот и до момента восстановления чувствительности от анестезии с целью определения наличия швов в просвете прямой кишки. Проникновение шовного материала может привести к абсцедированию [54] или кожно-ректальным фистулам [26, 87]. Если один шов пальпируется в просвете прямой кишки, то он рассекается посредством трансанального доступа. Если пальпируется несколько швов, то следует их переделать через первоначальный разрез [26]. Влияние проведенной колонопексии на развитие тенезм – сомнительное. В одном исследовании прооперированных собак с двусторонними или осложненными промежностными грыжами послеоперационные тенезмы выявлялись у 44 % пациентов. Все собаки в ходе исследования прошли колонопексию и ТВЗМ наряду с другими процедурами [46]. В других исследованиях с использованием колонопексии, вазопексии или цистопексии с восстановлением грыжевых ворот или без него послеоперационные тенезмы были в 50 % случаев [53, 82]. Длительное напряжение может вызвать выпадение прямой кишки (пролапс), особенно у пациентов с дивертикулом или отеком слизистой. Процент ректального пролапса, как сообщается, 2 % –13 %; пролапс, по-видимому, случается реже, когда выполняется колонопексия [2, 11, 22, 24, 75, 83, 87]. Некоторые авторы предполагают, что пациенты с двусторонним повреждением больше предрасположены к выпадению прямой кишки, и рекомендуют проводить хирургическое вмешательство с интервалом в несколько недель [6]. Ректальный пролапс может спонтанно регрессировать после прекращения потуг, однако некоторые пациенты нуждаются в размещении кисетного шва в течение нескольких дней. Если попытки вправления при помощи кисетного шва оказываются безуспешными, то может быть необходима колонопексия и резекция прямой кишки [2, 87].

Рецидивы

Частота рецидивов отмечена в диапазоне 0 % –70 % [2, 6, 11, 22, 30, 46, 64, 66, 75, 87, 89, 95]. Факторы, влияющие на рецидив, включают опыт хирурга, предыдущие операции, тип используемого шовного материала, недостаточную прочность местных тканей, натяжение швов, сопутствующие предрасполагающие факторы, а также кастрировано животное или нет. Рецидив после традиционной герниорафии составляет 10 % – 48 % и 0 % – 36 % после ТВЗМ [2, 16, 24, 92]. В одном исследовании 42 собак, перенесших ТВЗМ, рецидив был только у одной собаки после года наблюдения [64]. В другом исследовании из 31 собаки – у 8 была припухлость в промежности (в период наблюдения) [75]. При исследовании прямой кишки с помощью пальца у 11 собак было выявлено образование дивертикулов; вентральная тазовая диафрагма отсутствовала у 9, дорсальная и вентральная ТД отсутствовали у 7 собак [75]. Формирование «мешочков» было связано с отсутствием вентральной тазовой диафрагмы. У 4 собак было снижение тонуса анального сфинктера, 4 имели грыжи с другой стороны. Частота рецидивов составила 8 % в ретроспективном исследовании 100 собак, которые прошли традиционное лечение ПАГ или ТВЗМ [22]; неудача постигла в основном пациентов, лечившихся традиционным методом герниорафии. Частота рецидивов при ТПЯМ составила 36 % [61]. Два отдельных исследования показали, что уровень рецидивов у пациентов, прооперированных неопытными хирургами, был значительно выше, чем у животных, являвшихся пациентами опытных хирургов (70 % и 10 %) [32, 75]. Количество повторных операций также может повлиять на уровень рецидива. В исследовании собак, перенесшихтрадиционную герниорафию, рецидив произошел у 83 % собак, которые имели предыдущие операции, по сравнению с 43 %, которые таковых не имели [2].

Перинеальные грыжи у кошек

ПАГ редко встречаются у кошек (на эту тему имеются лишь отдельные статьи). В крупном ретроспективном исследовании на сегодняшний день были отмечены 40 кошек (преимущественно котов). Средний возраст на момент постановки диагноза составил 10 лет. Наиболее распространенные породы – домашние короткошерстные кошки (28 из 40). Общие клинические признаки включали тенезмы и запор. Как и у собак, причины ПАГ у кошек неизвестны. В одном исследовании 20 из 40 больных кошек уже имели данную проблему [91] либо одновременно имели различные патологии, которые, вероятно, сыграли роль в патогенезе [91]. 10 кошек (25 %) ранее оперировались по поводу перинеальной уретростомии. Другие состояния, связанные с развитием ПАГ, включали мегаколон, перинеальные массы, хронический фиброзирующий колит и травмы [79, 91, 92]. ПАГ у кошек также были связаны с кожной астенией – редким наследственным расстройством, связанным с изменением эластичности и прочности соединительной ткани [93]. Общие клинические результаты включают двусторонние ПАГ (95 %) и ректальные дилатации (97,5 %). Ущемление мочевого пузыря встречалось редко (2,5 %) [91], но у одной кошки был случай с двусторонней ПАГ (ретрофлексия развилась через 3 недели после родов [94]). В отличие от собак, перианальную припухлость отмечали у 22,5 % кошек, несмотря на образование двусторонней грыжи [91]. Хирургическое вправление ПАГ у кошек является методом выбора, однако при наличии минимальных клинических признаков может быть эффективным и медикаментозное лечение. ПАГ можно закрыть традиционным способом, ТВЗМ или лоскутом полусухожильной мышцы [79, 91]. У кошек с билатеральной ПАГ хирургическое лечение было полностью успешным в 73 %, частично успешным – в 20% и неудачным – в 7 % [91]. У кошек с первичным мегаколоном, вероятно, следует также рассматривать субтотальную колонэктомию.

Список литературы:

Bojrab M. J., Toomey A. Perineal herniorrhaphy. Comp Contin Educ Pract Vet. 8: 8–15, 1981.
Burrows C. F., Harvey C. E. Perineal hernia in the dog. J Sm Anim Pract. 14: 315–332, 1973.
Hayes H. M. Jr, Wilson G. P. Hormone-dependent neoplasms of the canine perianal gland. Cancer Res. 37: 2068–2071, 1977.
Кrahwinkel D. J. Rectal diseases and their role in perineal hernia. Vet Surg. 12: 160–165, 1983.
Orsher R. J., Johnston D. E. The surgical treatment of perineal hernia in dogs by transposition of the obturator muscle. Compend Contin Educ Pract Vet. 7: 233–239, 1985.
Weaver A. D., Omamegbe J. O. Surgical treatment of perineal hernia in the dog. J Sm Anim Pract. 22: 749, 1981.
Archibald J., Summer-Smith G. In Archibald J., editors: Canine surgery, 2^nd Edition, Santa Barbara, CA, 1974, American Veterinary Publications, pp. 544–546.
Harvey C. E. Treatment of perineal hernia in the dog – a reassessment. J Sm Anim Pract. 18: 505–511, 1977.
Mann F. A., Nonneman D. J., Pope E. R., et al. Androgen receptors in the pelvic diaphragm muscles of dogs with and without perineal hernia. Am J Vet Res. 56: 134–137, 1995.
Moltzen-Nielsen H. Perineal hernia. Proc XVth Int Vet Congr., Stockholm 1: 971–975, 1953.
Sjollema B. E., van Sluijs F. J. Perineal hernia in the dog: developments in its treatment and retrospective study in 197 patients. Tijdschr Diergeneeskd. 116: 142–147, 1991.
Van Sluijs F. J., Sjollema B. E. Perineal hernia repair in the dog by transposition of the internal obturator muscle. I. Surgical technique. Vet Q. 11:12–17, 1989.
Mann F. A. Perineal hernia: pathogenesis and surgical repair. рp. 261–270, 1994.
Evans H. E., editor. Miller’s anatomy of the dog, 3^rd Edition, Philadelphia, 1993, Saunders.
Anderson M. , Pope E. R., Constantinescu G. M. Perineal hernia in a cougar. J Am Vet Med Assoc. 201: 1771–1772, 1992.
Bellenger C. R. Perineal hernia in dogs. Aust Vet J. 56: 434–438, 1980.
Dabas V. S., Ashwar B. K., Tadkod D. M. Repair of perineal hernia in three Kankrej cows. Indian J Vet. 17: 48–49, 1996.
Dollar J. A.W. Regional veterinary surgery and operative techniques. London, 1912, Gay and Hancock, p. 558.
Dziwok U. Perineal hernia in a female dwarf rabbit. Kleintierpraxis. 51: 600–604, 2006.
Kuntze V. A. Disorders of performing elephants: perineal hernia, prepatellar bursitis and olecranal tyloma. Erkrankunger der Zootiere. 185–187, 1989.
Mathur A. Surgical management of perineal hernia in a buffalo – a case report. Intas Polivet. 4: 342–343, 2003.
Hosgood G., Hedlund C. S., Pechman R. D., et al. Perineal herniorrhaphy: perioperative data from 100 dogs. J Am Anim Hosp Assoc. 31: 331–342, 1995.
Sandwith D. J. Perineal hernia in the bitch. Vet Rec. 99: 18, 1976.
Pirker A., Brandt S., Seltenhammer M., et al. Relaxin expression in the testes of dogs with and without perineal hernia. Vet Med Austria. 96: 34–38, 2009.
Desai R. An anatomical study of the canine male and female pelvic diaphragm and the effects of testosterone on the status of levator ani of male dogs. J Am Anim Hosp Assoc. 18: 195–202, 1982.
Seim H. B. Surgical management of perineal hernia. Proc North Am Vet Conference 2009, pp. 1571–1573.
Walker R. G. Perineal hernia in the dog. Vet Rec. 77: 93– 94, 1965.
Blakely C. L. Perineal hernia. In Mayer K., Lacroix J. V., Hoskins H. P., editors. Canine surgery, Santa Barbara, CA, 1959, American Veterinary Publications.
Holmes J. R. Perineal hernia in the dog. Vet Rec. 76: 1250, 1964.
Spreull J. S. A., Frankland A. L. Transplanting the superficial gluteal muscle in the treatment of perineal hernia and flexure of the rectum in the dog. J Sm Anim Pract. 21: 265–278, 1980.
Alexander B., Carofiglio F., Balligand M., et al. Use of autogenous fascia lata graft for perineal herniorrhaphy in dogs. Vet Surg. 34: 405–192, 2002.
Shahar R., Shamir M. H., Niebauer G. W. A possible association between acquired nontraumatic inguinal and perineal hernia in adult male dogs. Can Vet J. 37: 614– 616, 1996.
Niles J. D., Williams J. M. Perineal hernia with bladder retroflexion in a female cocker spaniel. J Sm Anim Pract. 40: 92–94, 1999.
Sontas B. H., Apaydin S. O., Toydemir T. S. F. Perineal hernia because of retroflexion on the urinary bladder in a Rottweiler bitch during pregnancy. J Sm Anim Pract. 49: 421– 425, 2008.
Canfield R. B. Perineal hernia. In Slatter D., editor. Textbook of small animal surgery, Philadelphia, 1985, Saunders, pp. 487–498.
Mann F. A., Boothe H. W., Amoss M. S., et al. Serum testosterone and estradiol 17-beta concentration in 15 dogs with perineal hernia. J Am Vet Med Assoc. 194: 1578–1580, 1989.
Desai R. An anatomical study of the canine male and female pelvic diaphragm and the effects of testosterone on the status of levator ani of male dogs. J Am Anim Hosp Assoc. 18: 195–202, 1982.
Canfield R. B. Anatomical aspects of perineal hernia in the dog (PhD thesis). Australia, 1986, University of Sydney.
Merchav R., Feuermann Y., Shamay A. Expression of relaxin LRG7, canine relaxin, and relaxin-like factor in the pelvic diaphragm musculature of dogs with and without perineal hernia. Vet Surg. 34: 476–481, 2005.
Pettit G. D. Perineal hernia in the dog. Cornell Vet. 52: 261–279, 1962.
Weiss G. Relaxin in the male. Biol Reprod. 40: 197–200, 1989.
Niebauer G. W. Prostatic relaxin as potential mediator in the pathogenesis of canine perineal hernia. Abstract-XX1st Congress of the World Small Animal Veterinary Association, 1996, p. 401.
Niebauer G. W. Vet Surg. 25: 263, 1996.
Niebauer G. W., Ritter C., Wolf B. The potential role of relaxin in canine perineal hernia. Proc 75th Meet Fed Am Soc Exp Biol. 1991, abstract no. 7364.
Niebauer G. W., Shibly S., Seltenhammer M., et al. Relaxin of prostatic origin might be linked to perineal hernia formation in dogs. Ann N Y Acad Sci. 1041: 415–422.
Brissot H. N., Dupre G. P., Bouvy B. N. Use of laparotomy in a staged approach for resolution of bilateral or complicated perineal hernia in 41 dogs. Vet Surg. 33: 412–421, 2004.
Dupre G. P., Prat N., Bouvy B. The nature and treatment of perineal hernia-related lesions: a retrospective study of 60 cases and the definition of the protocol for treatment. Pract Med Chir Anim Comp. 28: 333–344, 1993.
Head K. W., Else R. W. Neoplasia and allied conditions of the canine and feline intestine. Vet Ann. 190–208, 1981.
Lewis D. D., Beale B. S., Pechman R. D., et al. Rectal perforations associated with pelvic fractures and sacroiliac fracture separations in four dogs. J Am Anim Hosp Assoc. 28: 175–181, 1992.
Maute A. M., Koch D. A., Montavon P. M. Perineal hernia in dogs – colopexy, vasopexy, cystopexy and castration as an alternative therapy in 32 dogs. Eur J Compan Anim Med. 13: 104–109, 2003.
Gadd J. D. Hypertrophy of the prostate gland. J Am Vet Med Assoc. 104: 15, 1944.
Sparks E. R. Prostatectomy in the reduction of perineal hernias in the dog. Vet Med. 28: 508, 1933.
Bilbrey S. A., Smeak D. D., DeHoff W. Fixation of the deferent ducts for retrodisplacement of the urinary bladder and prostate in canine perineal hernia. Vet Surg. 19: 24-27, 1990.
Dietrich H. F. Perineal hernia repair in the canine. Vet Clin North Am. 5: 383–399, 1975.
Leighton R. L. Surgical procedures for routine small animal practice – perineal herniorrhaphy. Vet Med. 55: 33–37, 1960.
Lawson D. D., Campbell J. R. Perineal hernia in the dog. Vet Rec. 76: 1522–1523, 1964.
Sjollema B. E., Venker-van Haagen A. J., van Sluijs F. J., et al.. Am J Vet Res. 54: 185–190, 1993. Electromyography of the pelvic diaphragm and anal sphincter in dogs with perineal hernia
Oliver J. E., Lorenz M. D. Confirming a diagnosis. In Oliver J. E., Lorenz M. D., editors. Handbook of veterinary neurologic diagnosis, Philadelphia, 1983, Saunders, pp. 106–121.
Sims M. H. Electrodiagnostic techniques in the evaluation of diseases affecting skeletal muscle. Vet Clin North Am Sm Anim Pract. 13: 145–162, 1983.
Burrows C. F., Harvey C. E. Anal splitting in dogs with perineal hernia: technique and results. J Anim Hosp Assoc. 14: 243, 1978.
Barreau P. Perineal hernia: three steps in one surgery; pexy, sterilization, repair. WSAVA/FECAVA Programme, pp. 637–639, 2008.
White R. A., Herrtage M. E. Bladder retroflexion in the dog. J Sm Anim Pract. 27: 735–746, 1986.
Seim H. B. III. Diseases of the anus and rectum. In Kirk R. W., editor: Current veterinary therapy, IX, Philadelphia, 1989, Saunders, pp. 916–921.
Hardie E. M., Kolota R. J., Earley T. D., et al. Evaluation of internal obturator muscle transposition in treatment of perineal hernia in dogs. Vet Surg. 12: 69–72, 1983.
Doust R. Semitendinosus muscle transfer flap for external anal sphincter incompetence in a dog. J Am Vet Med Assoc. 222: 1385–1387, 2003.
Clarke R. E. Perineal herniorrhaphy in the dog using polypropylene mesh. Aust Vet Pract. 19: 8–14, 1989.
Frankland A. L. Use of porcine dermal collagen in the repair of perineal hernia in dogs – a preliminary report. Vet Rec. 119: 13–14, 1986.
Kang E. H., Chang H. S., Yang H. T., et al. The use of polyprolene mesh for perineal herniorrhaphy in the dog. J Vet Clin. 23: 461–464, 2006.
Stoll M. R., Cook J. L., Pope E. T., et al. The use of porcine small intestinal submucosa as a biomaterial for perineal herniorrhaphy in the dog. Vet Surg. 31: 379, 2002.
Vnuk D., Maticic D., Kreszinger M., et al. A modified salvage technique in surgical repair of perineal hernia in dogs using polypropylene mesh. Veterinarni Medicina. 51: 111–117, 2006.
Hunt G. B. Practical solutions to perineal problems: perineal hernia. Proceedings of the 32nd Annual WSAVA Congress, Sydney, Australia, 2007.
Ellet E. W., Archibald J. Canine surgery, 1^st Edition, Wheaton, IL, 1965, American Veterinary Publications, Inc, p. 487.
Holt P. E., Lucke V. M. Rectal neoplasia in the dog: a clinicopathological review of 31 cases. Vet Rec. 116: 400–405, 1985.
Bone D. L. L. Surgical correction of canine perineal disorders. Vet Med. 127–138, 1992.
Orsher R. J. Clinical and surgical parameters in dogs with perineal hernia. Analysis of results of internal obturator transposition. Vet Surg. 15: 253–258, 1986.
Orton E. C. Perineal hernia. Proc Vet Surg. Forum, Am Coll Vet Surg. Chicago, 1988, pp. 52–53.
Early T. B., Kolata R. J. Perineal hernia in the dog: an alternative method of correction. In Bojrab MJ, editor: Current techniques in small animal surgery, Philadelphia, 1983, Lea & Febiger, pp. 405–407.
Mann F. A., Constantinescu G. M. Salvage techniques for failed perineal herniorrhaphy.
Vnuk D., Babic T., Stejskal D., et al. Application of a semitendinosus muscle flap in the treatment of perineal hernia in a cat. Vet Rec. 156: 182–184, 2005.
Badylak S. F., Coffey A. C., Lantz G. C., et al. A comparison of the resistance to infection of intestinal submucosa arterial grafts versus polytetrafluoroethylene arterial prosthesis in a dog model. J Vasc Surg. 19: 465–472, 1994.
Hiles M. C., Badylak S. F., Geddes L. A., et al. Porosity of porcine small intestine submucosa for use as a vascular graft. J Biomed Mater Res. 27: 139–144, 1993.
Huber D. J., Seim H. B., Goring R. L. Cystopexy and colopexy for the management of large or recurrent perineal hernias in the dog: nine cases (1994–1996). Vet Surg. 26: 253–254, 1997.
Popovitch C. A., Holt D., Bright R. Colopexy as a treatment for rectal prolapse in dogs and cats: a retrospective study of 14 cases. Vet Surg. 23: 115–118, 1994.
Gilley R. S., Caywood D. D., Lulich J. P., et al. Treatment with a combined cystopexy-colopexy for dysuria and rectal prolapse after bilateral perineal herniorrhaphy in a dog. J Am Vet Med Assoc. 222: 1717–1721, 2003.
Thompson S. E., Hendrickson D. A. Minimally invasive hernia repair: ancillary procedures for perineal hernia. In Freeman L. J., editor. Veterinary endosurgery, St Louis, 1998, Mosby, pp. 110–112.
Rochat M. C., Mann F. A. Sciatic perineal hernia in two dogs. J Sm Anim Pract. 39: 240–243, 1998.
Matthiesen D. T. Diagnosis and management of complications occurring after perineal herniorrhaphy in dogs. Comp Contin Educ Sm Anim Pract. 11: 797–822, 1989.
Canfield R. B. Perineal hernia. In Slatter D., editor. Textbook of small animal surgery, Philadelphia, 1985, Saunders, pp. 487–498.
Chambers J. N., Rawlings C. A. Application of a semitendinosus muscle flap in two dogs. J Am Vet Med Assoc. 199: 84–86, 1991.
Hayes H. M., Wilson G. P., Tarone R. E. The epidemiologic feature of perineal hernias in 771 dogs. J Am Anim Hosp Assoc. 14: 703–707, 1978.
Welches C. D., Scavelli T. D., Aronson M. G., et al. Perineal hernia in the cat: a retrospective study of 40 cases. J Am Anim Hosp Assoc. 28: 431–438, 1992.
Duval J. M., Anderson M. A., Constantinescu G. M. Perineal hernia in the cat. In Bojrab MJ, editor: Current techniques in small animal surgery, Baltimore, 1983, Williams & Wilkins, pp. 570–572.
Benitah N., Matousek J., Barnes R. F., et al. Diaphragmatic and perineal hernias associated with cutaneous asthenia in a cat. J Am Vet Med Assoc. 224: 706–709, 2004.
Rissellada, Kramer M., Van de Velde B., et al. Retroflexion of the urinary bladder associated with a perineal hernia in a female cat. J Sm Anim Pract. 44: 508–510, 2003.
Raffan P. J. A new surgical technique for repair of perineal hernias in the dog. J Sm Anim Pract. 34: 13–19, 1993.
Houlton J. E. F. Anal furunculosis: a review of seventy cases. J Sm Anim Pract. 21: 575–584, 1980.

Перинеальные грыжи (ПАГ) (часть 3)