Специализированное научно-практическое издания для ветеринарных врачей и студентов ветеринарных ВУЗов.

Авторы: S. J. Birchard, M. A. McLoughlin, D. D. Smeak. Факультет клинической ветеринарии, Университет штата Огайо, Колумбус, Огайо, США.

Резюме

Хилоторакс – редкое, но комплексное нарушение у домашних животных. К возможным этиологиям относятся новообразования, грибковые инфекции, сердечные гельминты, заболевания сердца, тромбоз краниальной полой вены и врожденный порок развития грудного протока. Большинство случаев хилоторакса у собак и кошек идиопатические. Лимфангиография с контрастом у собак и кошек во всех случаях показывает сильное расширение лимфатических сосудов средостения и плевры. Описанные методы лечения хилоторакса у животных включают устранение причины, например опухоли средостения, лигирование грудного протока и установку активных или пассивных дренирующих устройств, например плевроперитонеальное шунтирование. По нашему опыту, наилучшие результаты получаются при лигировании грудного протока, однако, поскольку лечение данного заболевания часто оказывается неэффективным, необходимы дальнейшие исследования. Хилоторакс, или скопление хилезной жидкости в плевральном пространстве, редко встречается у животных, хотя описан у собак (1–7), кошек (8–21) и крыс (22). Хилоторакс у животных – комплексное нарушение, которое может иметь различные причины и сложно поддаваться лечению. В последние годы проводились клинические и экспериментальные исследования, улучшившие наше понимание причин данного нарушения и успехи в его лечении. Тем не менее многие случаи остаются диагностической загадкой, а лечение часто оказывается неэффективным. В данной работе представлен обзор новейшей ветеринарной литературы, посвященной экспериментальному и спонтанному хилотораксу у собак и кошек, в особенности существенных исследований, проведенных за последние 10 лет и послуживших основой для текущей концепции диагностики и лечения.

Этиология

Хилоторакс возможен при ряде заболеваний. Исторически практикующие ветеринарные врачи пытались связывать хилоторакс с разрывом грудного протока (ГП) из-за тупой травмы, например после ДТП (7, 19, 21). Однако нам и другим авторам за несколько лет так и не удалось выявить вытекания хилуса в результате разрыва ГП при помощи лимфангиографии в клинических случаях хилоторакса (3, 4, 13, 14). Даже у собак с травмой в анамнезе, предшествовавшей появлению клинических признаков плеврального выпота, разрыв ГП не обнаруживался. В недавнем исследовании Hodges et al. попытались моделировать хилоторакс путем хирургического разреза или пересечения ГП (23). Ни у одного из экспериментальных животных не отмечено хронического накопления выпота. Лимфангиография, проведенная через 7 дней после экспериментального разреза ГП, показала спонтанное восстановление его проходимости. Очевидно, что закупорка ГП или краниальной полой вены вызывает хилоторакс. Она может быть обусловлена новообразованием (2, 5, 11, 17), грибковой гранулемой (1) или тромбом, образовавшимся из-за длительного нахождения катетера в яремной вене (24). Описана связь хилоторакса с такими новообразованиями, как тимома, лимфосаркома, лимфангиосаркома и опухоли тела аорты.

Рис. 1. Результат лимфангиографии грудного протока с положительным контрастом у кошки с инвазией сердечными гельминтами и хилотораксом. Обратите внимание на закупорку краниальной полой вены и заполнение лимфатических сосудов средостения (стрелки).

Спонтанное и экспериментальное заражение сердечными гельминтами (дирофиляриоз) у кошек также связывают с хилотораксом (16, 25). В одном случае сердечные гельминты, по-видимому, привели по крайней мере к частичной закупорке краниальной полой вены, обнаруженной с помощью лимфангиографии с контрастом (16) (рис. 1). Контрастное вещество заполняло множественные расширенные лимфатические сосуды средостения, а не краниальную полую вену, как у здоровых животных.

Также показано, что экспериментальная обструкция краниальной полой вены приводит к хилотораксу у собак и кошек (26–29). Через несколько дней или недель после лигирования краниальной полой вены чуть выше непарной вены у 70–100 % экспериментальных животных появлялся плевральный выпот (26, 29). Хотя сначала выпот бывает серозным, в последующем его вид может измениться на хилезный. Проводилось исследование лимфангиограмм ГП у собак с экспериментально индуцированным хилотораксом после лигирования краниальной полой вены (26). Лимфангиографическая картина соответствует выраженному расширению и пролиферации средостенных лимфатических сосудов и сходна с наблюдаемой картиной у собак с идиопатическим хилотораксом. Показано, что у собак и кошек хилоторакс может развиться вторично на фоне сердечных заболеваний (10, 15). Описано много случаев вторичного хилоторакса на фоне дилатационной кардиомиопатии у кошек (10, 15); мы наблюдали несколько случаев хилоторакса, связанного с сердечной недостаточностью или заболеванием перикарда, у собак. До получения результатов недавних исследований молочную жидкость, скапливавшуюся у кошек с заболеваниями сердца, называли псевдохилезным выпотом (30). Предполагалось, что хилезная природа этой жидкости маловероятна из-за отсутствия обнаруживаемого разрыва или повреждения ГП. Дальнейшее исследование показало, что при заболеваниях сердца возможен хилезный выпот.

Описан случай хилоторакса в результате врожденного порока развития ГП у афганской борзой (6). Лимфангиография с контрастом и вскрытие показали аномальное окончание ГП у плечеголовной вены. Нарушение тока лимфы в венозную систему могло привести к расширению лимфатических сосудов и образованию выпота у этого животного. Афганская борзая – одна из пород с известной предрасположенностью к хилотораксу (5), поэтому некоторые клиницисты предполагают возможность наследственной предрасположенности к порокам ГП. Исследований, которые подкрепили бы эту теорию, не проводилось. Лимфангиография с контрастом у нескольких здоровых афганских борзых не выявила аномалий (31). Лимфангиографическая картина у афганских борзых с хилотораксом сходна с таковой у других пород.

К прочим нарушениям с описанной связью с хилотораксом относятся диафрагмальная грыжа (19) и заворот доли легкого (32). При обоих этих состояниях остается неясным, каким образом первичное заболевание связано с хилотораксом. Значимой причиной хилоторакса у людей является прямое повреждение ГП во время торакальных операций или других процедур. У домашних животных хилоторакс в результате ятрогенной травмы ГП очень редок. Во многих случаях причину спонтанного хилоторакса у собак и кошек не удается установить даже после подробного диагностического обследования, и такие случаи классифицируют как идиопатические. Исследования собак и кошек с идиопатическим хилотораксом с помощью лимфангиографии показали сильное расширение лимфатических сосудов, особенно в краниальной части средостения (4, 14) (рис. 2). Современные теории, объясняющие механизм образования выпота у этих собак, обсуждаются в следующем разделе.

Патологическая физиология

Как и у других видов, ГП у собак и кошек собирает лимфу из большинства областей тела, кроме правой грудной конечности и правой стороны головы и шеи (33). Хилус поступает из кишечных лимфатических сосудов в брыжеечные лимфатические узлы, а затем в крупные протоки, сливающиеся с образованием цистерны грудного протока. ГП отходит от цистерны в краниальном направлении в виде одного или нескольких сосудов, в конечном итоге открывающихся в плечеголовную вену (3, 34) (рис. 3). У собак цистерна грудного протока и каудальная часть ГП расположены с правой стороны средостения, близко к аорте. В средней части средостения проток переходит справа налево, открываясь в левую плечеголовную вену. У кошек проток обычно располагается исключительно с левой стороны по своему ходу вкраниальном направлении (20). У собак хилус образуется и собирается в ГП со скоростью примерно 2–4 мл/кг в час. Хилезный выпот может образоваться при обструкции вен, собирающих содержимое ГП. Закупорка ГП или краниальной полой вены приводит к стазу в грудных лимфатических сосудах и их расширению. Вероятно, что в лимфатических сосудах возникает повышенное давление, хотя это пока не доказано. На основании результатов экспериментальных и клинических исследований установлено: хилус подтекает из этих расширенных лимфатических сосудов, что сходно с лимфатическим отеком конечности или другой части тела из-за недостаточного оттока лимфы.

У собак и кошек с заболеваниями сердца хилезный выпот может образоваться из-за нарушения оттока лимфы в венозную систему. В недавней публикации описано несколько кошек, у которых образовался хилезный выпот на фоне правосторонней сердечной недостаточности (10). У всех кошек при клиническом осмотре отмечено расширение яремной вены. Кроме того, экспериментальные исследования сердечной недостаточности показали значительное усиление образования лимфы в печени (35). Застой в печени может усилить ток лимфы в ГП и стать причиной относительной или функциональной обструкции в месте лимфовенозных анастомозов в области плечеголовной вены.

Патологическая физиология идиопатического хилоторакса остается неясной. Очевидные обструктивные изменения ГП или краниальной полой вены не выявлены, тем не менее лимфангиография с контрастом показывает обширное расширение лимфатических сосудов и плохое заполнение краниальной полой вены (4, 14). Торакотомия и вскрытие также не смогли выявить структурной причины расширения лимфатических сосудов. Некоторые авторы предположили, что хилоторакс обусловлен первичными нарушениями лимфатических сосудов или врожденным пороком развития лимфовенозного анастомоза ГП (4, 6). Однако для более точного определения этиологии и патологической физиологии идиопатического хилоторакса у собак и кошек необходимы дальнейшие исследования.

Рис. 2. Лимфангиограмма с контрастом краниальной части грудного протока у собаки с идиопатическим хилотораксом. Обратите внимание на заполнение лимфатических сосудов средостения (стрелки).

Рис. 3. Лимфангиограмма с контрастом краниальной части грудного протока у здоровой собаки. Стрелка показывает место впадения грудного протока в плечеголовную вену.

После лигирования ГП у животных с хилотораксом иногда сохраняется нехилезный выпот (4). Происхождение этой жидкости неясно, однако результаты одного исследования дают основания предполагать роль лимфатических сосудов легких в этом явлении (29). При использовании экспериментальной модели хилоторакса, упоминавшейся ранее (лигирование краниальной полой вены), лимфангиография эфферентных лимфатических сосудов показывает сильное расширение. Таким образом, при хилотораксе в результате закупорки краниальной полой вены также возможно нарушение оттока лимфы из легких, вследствие чего лимфа из легких может способствовать скоплению плеврального выпота. Этим нарушением можно объяснить сохранение плеврального выпота после лигирования ГП.

Интенсивный фиброзирующий плеврит – последствие хронического хилоторакса у собак и, особенно, кошек (9, 18, 36). Воспалительные изменения могут привести к выраженному ограничению объема легких со снижением объема вентиляции. Проведено несколько исследований для определения особенностей воспаления и патологической физиологии. Прогноз для животных с таким осложнением обычно неблагоприятный.

Прочие последствия хронического хилоторакса включают обезвоживание, гипопротеинемию и потерю веса. Хотя дренирование плевральной жидкости – важная паллиативная мера для животных с хилотораксом, потеря белка, электролитов и жиров может привести к ослаблению и истощению организма.

Диагноз

Клинические признаки у животных с хилотораксом обычно типичны для заболеваний, сопровождающихся уменьшением объема плеврального пространства, в частности это одышка, учащенное дыхание, снижение переносимости физических нагрузок и кашель. Также возможна потеря веса в зависимости от длительности присутствия выпота. Обычные рентгеновские снимки, как правило, показывают гидроторакс. Чтобы исключить новообразование средостения или грудной полости, можно сделать УЗИ до или после аспирации жидкости.

Обычно проводится полное кардиологическое обследование, включая аускультацию, проверку на наличие растяжения яремной вены и пульсовых волн, рентген, электро- и эхокардиографию. Кроме того, внимательно исследуют область сердца на наличие опухолей, а также оценивают перикард и перикардиальное пространство на наличие новообразований, утолщения или скопления жидкости.

Лабораторное исследование

Рекомендуется провести стандартные лабораторные исследования. При длительном хилотораксе клинический анализ крови может выявить лимфопению. Часто встречается гипопротеинемия, преимущественно за счет низкой концентрации альбумина. Также нужно провести исследование на скрытый дирофиляриоз (сердечные гельминты) методом ИФА.

Анализ плевральной жидкости состоит из цитологии, оценки просветления после добавления эфира и определения концентрации холестерина и триглицеридов. Хилезную жидкость следует подозревать, если жидкость имеет белый цвет и не становится прозрачной после центрифугирования. При цитологическом исследовании обнаруживается большое количество лимфоцитов. Во влажном препарате видны хиломикроны. Если хронический выпот осложнен воспалением или жидкость отбирается у животного после многократного торакоцентеза, препарат приобретает более характерный для воспаления вид и содержит многочисленные нейтрофилы (5). Кроме того, цитология может помочь обнаружить опухолевые клетки.

При соотношении концентраций холестерина/триглицеридов в плевральной жидкости менее 1 ее классифицируют как предположительно хилезную (37).

Лимфангиография

Описано много техник лимфангиографии ГП, однако контрастная лимфангиография с помощью водорастворимых контрастных веществ, вводимых в брыжеечные лимфатические сосуды, показала себя наиболее эффективным методом исследования собак и кошек с хилотораксом (3, 4, 14). Несмотря на необходимость лапаротомии для этого исследования, оно не занимает много времени и позволяет превосходно рассмотреть детали лимфатической системы. За последние 12 лет мы применяли лимфангиографию с введением контраста в брыжеечные сосуды как до, так и после лигирования ГП (4, 14). Исследование перед лигированием помогает установить анатомию системы ГП и выявить аномалии лимфатических сосудов. Исследование после лигирования проводится для подтверждения непроходимости протока и отсутствия «пропущенных ветвей». По-видимому, лимфангиография улучшает исход лечения, хотя контролируемых сравнительных клинических исследований не проводилось. Некоторые авторы высказывают сомнения, так как лимфангиография сразу после лигирования не всегда позволяет точно оценить полноту окклюзии ГП. Так, в одном исследовании кошек, у которых ГП просто рассекали без наложения лигатуры, лимфангиография сразу после операции показывала псевдообструкцию (38).

Кроме того, лимфангиография может применяться для долговременного наблюдения за животными с рецидивирующим плевральным выпотом. В редких случаях после лигирования грудного протока образуются лимфатические коллатерали в обход лигатур, и хилезный плевральный выпот скапливается снова (39). Для лечения таких животных коллатерали лигировали повторно либо имплантировали активные дренирующие устройства.

Кроме того, с помощью лимфангиографии можно диагностировать аномалии ГП. В одном экспериментальном исследовании здоровым собакам и собакам с надрезанным или пересеченным грудным протоком, лигированной краниальной полой веной проводили лимфосцинтиграфию (40). При этом между данными группами собак не было выявлено различий. Однако у собак с хилотораксом в результате лигирования краниальной полой веныпоказана диффузная радиоактивность грудной клетки, что сопоставимо с расширением грудных лимфатических сосудов. Эти методы нуждаются в проверке с помощью клинических исследований.

Лечение

Нехирургическое

Предпринимались попытки лечения хилоторакса различными медикаментозными способами. Большинство авторов соглашается, что паллиативный дренаж грудной полости важен для облегчения респираторных симптомов и комфорта животного. Предлагались нежирные диеты для снижения тока хилуса в ГП и, следовательно, сокращения объема выпота (41). Для дополнения нежирного рациона также применялись триглицериды со средней длиной цепи (ТСДЦ). Сообщается, что триглицериды со средней длиной цепи всасываются непосредственно в системе воротной вены (42, 43). Однако Jensen et al. описали женщину с хилотораксом, получавшую ТСДЦ, у которой было обнаружено значительное количество ТСДЦ в хилусе (42). Они обнаружили значительно большую концентрацию декановой кислоты (C10:0) по сравнению с октановой (C8:0) в хилусе несмотря на большее содержание октановой кислоты в диете. Недавно мы изучили влияние диеты и масла, содержащего ТСДЦ, на ток содержимого в ГП и состав лимфы у собак (44, 45). У экспериментальных собак непрерывно собирали лимфу из ГП на протяжении нескольких дней во время кормления рационами с разным содержанием жира. Хотя рацион значительно влиял на содержание триглицеридов в хилусе, различия в скорости тока лимфы между группами отсутствовали. Кроме того, показано, что у собак, получавших масло с ТСДЦ, последние присутствовали в лимфе ГП в значительной концентрации. Это предварительное исследование дает основания полагать, что, в отличие от предыдущих публикаций, низкожировая диета и масло, содержащее ТСДЦ, не оказывают значительного благоприятного действия у собак с хилотораксом. Для оценки всасывания ТСДЦ и их роли в лечении хилоторакса необходимо больше исследований.

Плевродез предложен в качестве возможного метода лечения хилоторакса (46–48). В отдельных ветеринарных публикациях описаны определенные успехи при применении этого метода (46, 48). Однако при оценке в контролируемых условиях мы обнаружили, что эффективность тетрациклина, вещества, раздражающего плевру, для формирования спаек плевры у собак с экспериментальным выпотом ограничена (49). Кроме того, наш клинический опыт применения тетрациклина для плевродеза с целью лечения хилоторакса доказывает, что метод себя не оправдывает.

Хирургические методы

Хирургическое лечение хилоторакса заключается главным образом в лигировании ГП (3, 4, 14) либо имплантации активных или пассивных дренажей (8, 50, 51). Лигирование ГП применяется с 1950 гг. для перенаправления тока лимфы из ГП через альтернативные лимфатические пути (7, 21). Показано, что лигирование протока в каудальной части средостения у здоровых собак приводит к перенаправлению тока лимфы через альтернативные лимфовенозные анастомозы, например в каудальную полую вену или непарную вену (3). До развития техник пред- и послеоперационной лимфангиографии лигирование ГП в качестве метода лечения хилоторакса было успешным лишь в некоторых случаях. Исследование 15 собак с идиопатическим хилотораксом показало частоту успешных случаев 55 % (полное исчезновение выпота) при лигировании ГП в сочетании с лимфангиографией (4). Одно из исследований, проводимых на кошках, показало меньшее число успешных случаев при лигировании ГП: лишь в 20 % случаев были получены хорошие результаты (12). Позднее исследование 19 кошек с хилотораксом показало успешный результат лигирования в 53 % случаев (14). Выпот, сохраняющийся после лигирования, может быть хилезным или нехилезным. Постоянный или рецидивирующий хилезный выпот после лигирования может быть обусловлен пропущенными ветвями ГП или коллатеральными ветвями вокруг лигатуры. Как упоминалось ранее, этиология хилезного выпота после лигирования неясна, однако возможно, что он обусловлен изменениями лимфатических сосудов, не связанных непосредственно с ГП, например лимфатических сосудов легких.Эмболизация ГП также исследовалась в качестве метода лечения хилоторакса (52). В одном исследовании нескольким экспериментальным животным вводили изобутил-2-цианоакрилат через катетер, установленный в брыжеечный лимфатический сосуд. Соединение для эмболизации смешивали с контрастным веществом для флуороскопического контроля материала в ГП. Обструкция ГП была полной с минимальными осложнениями.

Клиническое применение этой техники все еще предстоит оценить. Многие авторы рекомендуют пассивные или активные дренажи (8, 50, 51). Этот метод используется для начального лечения хилоторакса либо в качестве дополнительного метода у животных, у которых выпот не исчезает после лигирования ГП. Для спуска плевральной жидкости в перитонеальную полость или венозную систему применяются активные дренажи, такие как плевроперитонеальный шунт Denver®. Оба метода дают хороший результат в некоторых случаях, однако часто возникают осложнения. Дренажи могут забиваться, особенно если жидкость остается хилезной. Кроме того, способность перитонеальной полости к всасыванию всей перенаправляемой в нее жидкости может постепенно снизиться, что приведет к хилезному асциту. По нашему опыту, лучшие результаты с помощью шунта Denver получаются у собак с нехилезной плевральной жидкостью (51).

Для удаления жидкости из плевральной в перитонеальную полость также применяются пассивные дренажи (8). Дренажи Пенроуза или диски из силиконовой резины с отверстиями устанавливаются в диафрагму для пассивного перемещения и последующего всасывания жидкости поверхностями брюшины. Описано лишь несколько случаев успешного применения этого метода. Недавно было проведено экспериментальное исследование по оценке дисков из силиконовой резины с отверстиями, имплантированных кошкам (53). Чтобы установить, обеспечивают ли диски долговременное дренирование, проводили сцинтиграфическое исследование. К 83–112 дню у 5 из 6 кошек произошла полная окклюзия дисков печенью, сальником и фибрином. Эти результаты согласуются с нашим клиническим опытом. Плохие результаты были обусловлены закупоркой дренажей органами брюшной полости.

Выводы

Хилоторакс остается сложным для лечения нарушением, возможно, из-за недостаточного понимания его этиологии и патологической физиологии. Хотя показано, что определенные заболевания являются первичной причиной хилезного выпота у собак и кошек, в большинстве случаев выявить причину не удается. Достижения, ставшие возможными благодаря лимфангиографии, улучшили наше понимание идиопатического хилоторакса, однако для точного установления конкретных этиологий необходимы дальнейшие исследования. Хотя данные противоречивы, мы отдаем предпочтение лигированию ГП как лучшему методу лечения идиопатического хилоторакса. Результаты лигирования ГП улучшились за последние 20 лет, однако неудачные случаи по-прежнему часты. В литературе описано много отдельных случаев успешного лечения альтернативными способами, однако опубликовано лишь немного крупных серий случаев, на основании которых ветеринарные врачи могли бы составить рациональный план лечения. Необходимы дальнейшие экспериментальные и клинические исследования, посвященные механизмам заболевания, а также альтернативным методам лечения.

Литература

Willard, MD, JD Conroy: Chylothorax associated with blastomycosis in a dog. J. Am. Vet. Met. Assoc. 186 (1985), 72-73.
Peaston, AE, DB Church, GS Allen, et al: Combined chylothorax,chylopericardium, and cranial vena cava syndrome in a dog with thymoma. J. Am. Vet. Med. Assoc. 197 (1990), 1354-1356.
Birchard, SJ, HD Cantwell, RM Bright: Lymphangiography and ligation of the canine thoracic duct: A study in normal dogs and three dogs with chylothorax. J. Am. Anim. Hosp. Assoc. 18 (1982) 769-777.
Birchard, SJ, DD Smeak, TW Fossum: Results of thoracic duct ligation in dogs with chylothorax. J. Am. Vet. Med. Assoc. 193 (1988),68-71.
Fossum, TW, SJ Birchard, RM Jacobs. Chylothorax in 34 dogs. J. Am. Vet. Med. Assoc. 188 (1986),1315-1317.
Suter, PF, RW Greene: Chylothorax in a dog with abnormal termination of the thoracic duct. J. Am. Vet. Med. Assoc. 159 (1971), 302-309.
Patterson, DF, TO Munson: Traumatic chylothorax in smal1 animals treated by ligation of the thoracic duct. J. Am. Vet. Med. Assoc. 133 (1958), 452-458.
Peterson, SL, PD Pion, EM Breznock: Passive pleuroperitoneal drainage for management of chylothorax in two cats. J. Am. Anim. Hosp. Assoc. 25 (1989), 569-572.
Suess, RP, JA Flanders, KA Beck, et al: Constrictive pleuritis in cats with chylothorax: 10 cases (1983-1991). J. Am. Anim. Hosp. Assoc. 30 (1994), 70-77.
Fossum, TW, MW Miller, KS Rogers, et al: Chylothorax associated with right-sided heart failure in five cats. J. Am. Vet. Med. Assoc. 204 (1994),84-89.
Stobie, D, JL Carpenter: Lymphangiosarcoma of the mediastinum, mesentery, and omentum in a cat with chylothorax. J. Am. Anim. Hosp. Assoc. 29 (1993), 78-80.
Fossum, TW, SD Forrester, CL Swenson, et al: Chylothorax in cats: 37 cases (1969-1989). J. Am. Vet. Med. Assoc. 198 (1991), 672-678.
Fossum, TW, SJ Birchard: Mesenteric lymphography and ligation of the thoracic duct in a cat with chylothorax. J. Am. Vet. Med. Assoc. 187 (1985),1036-1037.
Kerpsack SJ, MA McLoughlin, SJ Birchard, et al: Results of mesenteric lymphangiography and thoracic duct ligation in cats with chylothorax. Vet. Surg. 22 (1993), 386.
Birchard, SJ, WA Ware, TW Fossum, et al: Chylothorax associated with congestive cardiomyopathy in a cat. J. Am. Vet. Med. Assoc. 189 (1986),1462-1464.
Birchard, SJ, SA Bilbrey: Chylothorax associated with dirofilariasis in a cat. J. Am. Vet. Med. Assoc. 197 (1990), 507-509.
Forrester, SD, TW Fossum, KS Rogers: Diagnosis and treatment of chylothorax associated with lymphoblastic lymphosarcoma in four cats. J. Am. Vet. Med. Assoc. 198 (1991),291-294.
Glennon, JC, JA Flanders, JT Rothwel1, et al: Constrictive pleuritis with chylothorax in a cat: A case report. J. Am. Anim. Hosp. Assoc. 23 (1987), 539-543.
Meincke, JE, WV Hobbie, LR Barto: Traumatic chylothorax with associated diaphragmatic hernias in the cat. J. Am. Vet. Med. Assoc. 155 (1969), 15-20.
Lindsay, FEF: Chylothorax in the domestic cat - a review. J. Sm. Anim. Pract. 15 (1974), 241-258.
Graber, ER: Diagnosis and treatment of a ruptured thoracic duct in the cat. J. Am. Vet. Med. Assoc. 146 (1965), 242-245.
Gupta, BN, RE Faith: Chylothorax in a rat. J. Am. Vet. Med. Assoc. 17 (1977), 973-974.
Hodges, CC, TW Fossum, W Evering: Evaluation of thoracic duct healing after experimental laceration and transection. Vet. Surg. 22 (1993), 431-435.
Goodger, JW: Intravenous catheter placement for fluid therapy and for central venous pressure measurement in small animals. J. Am. Vet. Med. Assoc. 162 (1973),121-122.
Donahoe, JM, SK Kneller, PE Thompson, et al: Chylothorax subsequent to infection of cats with Dirofilaria immitis. J. Am. Vet. Assoc. 164 (1974),1107-1110.
Fossum, TW, SJ Birchard: Lymphangiographic evaluation of experimentally induced chylothorax after ligation of the cranial vena cava in dogs. Am. J. Vet. Res. 47 (1986), 967-971.
Blalock, A, RS Cunningham, CS Robinson: Experimental production of chylothorax by occlusion of the superior vena cava. Ann. Surg. 104 (1936), 359-364.
Kerpsack, SJ, M McLoughlin, SJ Birchard: Lymphangiographic evaluation of experimental chylothorax in cats. Master thesis, Ohio State University, 1994.
Bilbrey, SA, SJ Birchard: Pulmonary lymphatics in dogs with experimentally induced chylothorax. J. Am. Anim. Hosp. Assoc. 30 (1994), 86-91.
McConnell, MF, DR Huxtable: Pseudochylous effusion in a cat with cardiomyopathy. Aust. Vet. J. 58 (1982), 72-74.
Birchard, unpublished data.
Lord, PF, TP Greiner, RW Greene, et al: Lung lobe torsion in the dog. J. Am. Anim. Hosp. Assoc. 9 (1973), 473-482.
Evans, HE, GC Christensen: Miller's Anatomy of the Dog, II Ed., WB Saunders, Philadelphia, PA, 1979, pp. 803-806.
Kagan, KC, EM Breznock: Variations in the canine thoracic duct system and the effects of surgical occlusion demonstrated by rapid aqueous lymphography using an intestinal lymphatic trunk. Am. J. Vet. Res. 40 (1978), 948-958.
Dumont, AE, MH Witte: Significance of excess lymph in the thoracic duct in patients with hepatic cirrhosis. Am. J. Surg. 112 (1966), 401-406.
Fossum, TW, WN Evering, MW Miller, et al: Severe bilateral fibrosing pleuritis associated with chronic chylothorax in five cats and two dogs. J. Am. Vet. Med. Assoc. 201 (1992), 317-324.
Fossum, TW, RM Jacobs, SJ Birchard: Evaluation of cholesterol and triglyceride concentrations in differentiating chylous and nonchylous pleural effusions in dogs and cats. J. Am. Vet. Med. Assoc. 188 (1986), 49-51.
Martin, RA, LS Richards, DL Barber, et al: Transdiaphragmatic approach to thoracic duct ligation in the cat. Vet. Surg. 17 (1988), 22-26.
Kerpsack SJ, DD Smeak, SJ Birchard: Progressive thoracic lymphangiectasia in a dog with recurrent chylothorax after thoracic duct ligation. J. Am. Vet. Med. Assoc. (in press).
Hodges, CC, TW Fossum, A Komkov, et al: Lymphoscintigraphy in healthy dogs and dogs with experimentally created thoracic duct abnormalities. Am. J. Vet. Res. 53 (1992), 1048-1053.
Birchard, SJ, TW Fossum: Chylothorax in the dog and cat. Vet. Clin. N.A. 17 (1987), 271-283.
Jensen, GL, EA Mascioli, LP Meyer, et al: Dietary modification of chyle composition in chylothorax. Gastro. 97 (1989), 761-765.
Bloom, B, IL Chaikoff, WO Reinhardt: Intestinal lymph as pathway for transport of absorbed fatty acids of different chain lengths. Am. J. Physiol. 166 (1951), 451-455.
Sikkema, DA, MA McLoughlin, SJ Birchard, et al: A surgical technique for continuous collection ofthoracic duct lymph in dogs. Vet. Surg. 22 (1993), 398.
Sikkema, DA, MA McLoughlin, SJ Birchard, et al: Effect of dietary fat on triglyceride and fatty acid composition of thoracic duct lymph in dogs. Vet. Surg. 22 (1993), 398-399.
Orsher, RJ, CE Harvey: Tetracycline sclerotherapy for the treatment of chylothorax in the dog. Vet. Surg. 19 (1990), 72-73.
Birchard, SJ, L Gallagher: Use of pleurodesis in treating selected pleural diseases. Compo Cont. Ed. Sm. Anim. 10 (1988), 826-832.
Laing, EJ, AM Norris: Pleurodesis as a treatment for pleural effusion in the dog. J. Am. Anim. Hosp. Assoc. 22 (1986), 193-196.
Gallagher, LA, SJ Birchard, SE Weisbrode: Effects of tetracycline hydrochloride on pleurae in dogs with induced pleural effusion. Am. J. Vet. Res. 51 (1990), 1682-1687.
Willauer, CC, EM Breznock: Pleurovenous shunting technique for treatment of chylothorax in three dogs. J. Am. Vet. Med. Assoc. 191 (1987), 1106-1109.
Smeak, DD, L Gallagher, SJ Birchard, et al: Management of intractable pleural effusion in a dog with a pleuroperitoneal shunt. Vet. Surg. 16 (1987), 279-285.
Pardo, AD, RM Bright, MA Walker, et al: Transcatheter thoracic duct embolization in the dog. An experimental study. Vet. Surg. 18 (1989),279-285.
Holtsinger, RH, GW Ellison, CR Berry, et al: Transdiaphragmatic passive pleuroperitoneal drainage in the cat: A scintigraphic and histologic evaluation. Vet. Surg. (1993)

Хилоторакс у собак и кошек: обзор