Связанный с лептоспирозом вторичный гиперальдостеронизм у собаки. Клинический случай. Часть 2.
Интенсивная терапия

Связанный с лептоспирозом вторичный гиперальдостеронизм у собаки. Клинический случай. Часть 2.

Автор: Кутузова П. А., ветеринарный врач-терапевт; Романек Е. А., ветеринарный врач ОРИТ. 
Ветеринарная клиника доктора Сотникова, г. Санкт-Петербург.
 
Целью данной статьи является детальное описание клинических проявлений лептоспироза у собак, течения этого заболевания, терапевтических подходов к его лечению и прогнозов, а также анализ ассоциированного с этим заболеванием вторичного гиперальдостеронизма на примере конкретного клинического случая.

Продолжение. Начало в №2.2025

Забегая вперед, приведем результаты проведенных анализов. Результат ПЦР на определение антигенов возбудителя лептоспироза в моче оказался положительным. С помощью реакции микроагглютинации (РМА) были обнаружены специфические антитела к лептоспирам Pomona в титре 1:3200, Icterohaemorrhagiae, Autumnalis и Cynopteri в титре 1:1600, а также к лептоспире Grippotyphosa в титре 1:50, что в совокупности свидетельствовало о положительном результате. РМА для обнаружения сывороточных антител против лептоспир и ПЦР для обнаружения ДНК лептоспир в настоящее время являются наиболее полезными диагностическими инструментами, доступными для практикующих врачей. Каждый из этих тестов имеет свои преимущества и ограничения, и их эффективность зависит от ряда факторов, включая стадию развития инфекции, а также предшествующее лечение антибиотиками. 

Более подробно с преимуществами и недостатками этих исследований можно ознакомиться в обновленном консенсусном заявлении ACVIM по лептоспирозу у собак27.

Рениновая активность (PRA) составила 22,50 нг/мл/час (реф. зн. 0,30–2,60 нг/мл/час), результат измерения уровня альдостерона составил 387,8 пг/мл (реф. зн. 2–96 пг/мл), что в совокупности давало основание для постановки диагноза гиперренинемического гиперальдостеронизма, также известного как вторичный гиперальдостеронизм. Вторичный гиперальдостеронизм (ВГА) является редким состоянием в человеческой и (тем более) в ветеринарной медицине, в частности данные о ВГА у собак ограничены экспериментальными исследованиями. Альдостерон – это минералокортикоидный гормон, который способствует задержке натрия и воды почками, в конечном итоге повышая артериальное давление. Однако известно, что для собак артериальная гипертензия – это не обязательная находка даже при первичном гиперальдостеронизме. Альдостерон также увеличивает выделение калия с мочой, что приводит к гипокалиемии. Секреция альдостерона происходит в клубочковой зоне коры надпочечников. Вторичный гиперальдостеронизм обусловлен чрезмерной активацией ренин-ангиотензин-альдостероновой системы (РААС). У людей он может быть результатом физиологического состояния транзиторной активации РААС (например, гиповолемии), он также наблюдается при патологических состояниях устойчивой активации системы. 
В данном клиническом случае у пациента отсутствовали признаки гиповолемии, анализ крови на альдостерон был взят после регидратации. Стеноз почечной артерии, например атеросклеротического или фибромышечного генеза, снижает почечный кровоток, что приводит к ложной стимуляции гиповолемии и увеличению секреции альдостерона. Застойная сердечная недостаточность левого желудочка и легочное сердце вызывают снижение сердечного выброса, что приводит к стимуляции выработки альдостерона. У пациентов с циррозом печени, нефротическим синдромом и асцитом снижение объема циркулирующей жидкости ухудшает перфузию почек и способствует увеличению секреции альдостерона. Активация РААС может быть вызвана опухолью, продуцирующей ренин в юкстагломерулярных клетках, хотя такие случаи редки. В нашем случае неадекватная секреция ренина и альдостерона у собаки, вероятно, была связана с почечной гипоперфузией на фоне лептоспирозного повреждения. При ВГА как концентрация ренина, так и активность ренина в плазме возрастают, поскольку ренин является основным стимулятором избыточной продукции альдостерона. В результате соотношение альдостерона и ренина в сыворотке оказывается значительно ниже, чем при первичном гиперальдостеронизме. Лечение вторичного гиперальдостеронизма наиболее эффективно при устранении основного заболевания, что обычно приводит к исчезновению симптомов. Для контроля гипокалиемии могут применяться добавки калия и калийсберегающие диуретики30.
Результаты бакпосева желчи, печени, а также анализ биоптатов методом ПЦР для выявления антигенов возбудителей кампилобактериоза и бартонеллеза оказались отрицательными. Цитологическое исследование желчи не предоставило значимой информации, выявив лишь нейтрофильное воспаление, которое могло быть связано с примесью периферической крови. 
По результатам гистологического исследования печени был поставлен морфологический диагноз «хронический холангиогепатит умеренной степени выраженности, преимущественно лимфоплазмоцитарный».

На конец третьих суток пребывания пациента в ОРИТ (после хирургического вмешательства) терапия включала доксициклин, спиронолактон, смекту, поддерживающую инфузионную терапию с использованием раствора стерофундин и мультимодальную анальгезию с применением фентанила (3 мкг/кг/ч), кетамина (0,5 мг/кг/ч) и лидокаина (2 мг/кг/ч).

На пятые сутки, спустя двое суток после операции, общее состояние пациента и результаты анализов крови улучшились, активность увеличилась, собака стала более эмоциональной, но самостоятельный аппетит по-прежнему отсутствовал. Диарея не наблюдалась, жажда и мочеиспускание оставались без особенностей. Болезненность брюшной стенки оценивалась как легкая. Были отменены мультимодальная анальгезия, поддерживающая инфузионная терапия и смекта. Однако появились новые симптомы: кашель и увеличение частоты дыхательных движений во сне до 30 дых. дв./мин, без признаков диспноэ. Уровень насыщения крови кислородом (SpO2) без дополнительной оксигенотерапии составлял 93–95%. При рентгенологическом исследовании были выявлены преимущественно диффузные альвеолярные затемнения легочной ткани, охватывающие почти все поля легких. Наибольшая площадь поражения наблюдалась в каудальных долях обоих легких (рис. 9). Данные изменения в совокупности с установленным диагнозом указывали на высокую вероятность геморрагий в легочной паренхиме как одного из проявлений лептоспироза.


Бронхоальвеолярный лаваж не проводился по причине сохраняющегося стабильного состояния пациента, уже поставленного диагноза и назначенного специфического антибиотика. Значения коагулограммы, полученные в этот период, находились в пределах нормы.

Синдром лептоспирозного легочного кровотечения (англ. leptospiral pulmonary haemorrhage syndrome; LPHS) является тяжелым проявлением острого лептоспироза и в последние годы все чаще диагностируется у собак и других видов животных14. Гистопатологические поражения легочной ткани при LPHS имеют схожие характеристики у разных видов и проявляются различной степенью внутриальвеолярного кровоизлияния при отсутствии выраженного воспалительного клеточного инфильтрата или васкулита. Внутриальвеолярный отек, фибрин и гиалиновые мембраны, характерные для патологий с диффузным альвеолярным повреждением (например, острый респираторный дистресс-синдром; ОРДС), также могут наблюдаться при LPHS, но не являются доминирующими признаками15. Патогенетические механизмы LPHS плохо изучены. В настоящее время исследуются несколько гипотез, включая системные воспалительные, иммуноопосредованные и прямые эффекты, вызываемые лептоспирами. Внутриальвеолярное кровоизлияние может быть обнаружено даже у собак без явных респираторных признаков17. Это указывает на то, что LPHS может быть более распространенным у собак с лептоспирозом, чем принято считать. Рентгенографические изменения, указывающие на LPHS, обычно первоначально проявляются в каудодорсальных отделах легочных полей и, как правило, носят двусторонний и недолевой характер. Поражения варьируются от легкого интерстициального рисунка до легкого или тяжелого ретикулонодулярного легочного рисунка с очаговыми альвеолярными инфильтратами. У некоторых собак наблюдается небольшое количество плеврального выпота (рис. 10). Рентгенографические изменения могут присутствовать даже при отсутствии клинических признаков респираторных нарушений26.

На восьмые сутки пребывания в ОРИТ у пациента наблюдались полное восстановление аппетита, нормализация общего состояния и активности. Респираторные симптомы были купированы, а рентгенологическая картина пришла в норму (рис. 11). Терапия включала использование доксициклина и спиронолактона в ранее установленных дозировках.

На 26-й день после начала применения доксициклина общее состояние пациента оставалось стабильным. Были взяты образцы крови для проведения общеклинического и биохимического анализов, а также моча для определения антигенов возбудителя лептоспироза методом ПЦР и сыворотка крови для выявления специфических антител к лептоспирам с использованием метода РМА.
Результаты ПЦР-исследования были отрицательными, что указывало на отсутствие ДНК лептоспир в образце. Реакция микроагглютинации (РМА) выявила присутствие антител к возбудителю лептоспироза только серогруппы Icterohaemorrhagiae в титре 1:800, что могло соответствовать поствакцинальному уровню. Антитела к другим серогруппам лептоспир не были обнаружены.
Результаты клинического анализа крови были без изменений. В биохимическом профиле наблюдались снижение уровня аланинаминотрансферазы с 2656,1 до 268,9 МЕ/л (реф. зн. 10,0–80,0 МЕ/л), нормализация уровня аспартатаминотрансферазы, снижение уровня щелочной фосфатазы с 5084,3 до 984,8 МЕ/л (реф. зн. 20,0–150,0 МЕ/л), а также рост уровня гамма-глутамилтрансферазы с 48,7 до 55,3 МЕ/л (реф. зн. 0,0–10,0 МЕ/л). Уровень глутаматдегидрогеназы снизился с 934,3 до 35,68 МЕ/л (реф. зн. 0,0–12,0 МЕ/л), уровень холестерина снизился с 7,29 до 7,08 ммоль/л (реф. зн. 3,5–7,0 ммоль/л), а концентрация общего билирубина нормализовалась. 
В связи с отрицательными результатами ПЦР-исследования на лептоспироз, отсутствием или снижением антител к антигенам возбудителей лептоспироза, почти полной нормализацией биохимических показателей крови, а также полной нормализацией показателей клинического анализа крови и общего состояния пациента было принято решение отменить доксициклин. Пациент был выписан из стационара с назначением препарата «Спиронолактон» – 3 мг/кг 1 раз в день перорально. Спустя 14 дней после выписки по результатам мониторинга уровня электролитов препарат был отменен.

Выводы

Лептоспироз – высококонтагиозное заболевание, преимущественно поражающее собак, но также способное вызывать клинические проявления у людей. Болезнь может протекать как бессимптомно (при носительстве), так и в тяжелой форме с возможным летальным исходом, несмотря на своевременное лечение. Клиническая картина лептоспироза характеризуется вариабельностью симптомов, что затрудняет прогноз течения заболевания.
В ходе недавнего исследования, направленного на оценку проявлений органной дисфункции у собак с острым лептоспирозом, были проанализированы данные 298 пациентов. Результаты показали высокую частоту поражения различных систем органов: 99,7% собак имели почечную дисфункцию, 35,4% – печеночную (подтвержденную наличием гипербилирубинемии), 68,8% – легочную и 18,4% – признаки диссеминированного внутрисосудистого свертывания (ДВС). У большинства собак (43,6%) наблюдалось поражение двух различных систем органов. В 24,5% случаев наблюдалось поражение только одного органа, в 23,2% – поражение трех систем органов, а у 8,7% животных были поражены все четыре системы органов14. Эти данные подчеркивают необходимость повышенного внимания ветеринарных врачей к лептоспирозу в своей повседневной практике. 
Особое внимание хотелось бы обратить на то, что в данном исследовании впервые было описано развитие вторичного гиперальдостеронизма при лептоспирозе, что, вероятно, привело к стойкой гипокалиемии, несмотря на введение парентеральных препаратов калия.


Список литературы:
  1. Faine S., Adler B., Bolin C., et al. Leptospira and Leptospirosis. 2nd ed. Melbourne: MediSci, 1999.
  2. Ganoza C. A., Matthias M. A., Saito M., et al. Asymptomatic renal colonization of humans in the peruvian Amazon by Leptospira. PLoS Negle Trop Dis, 2010.
  3. Arbour J., Blais M. C., Carioto L., et al. Clinical leptospirosis in three cats (2001-2009). J Am Anim Hosp Assoc, 2012.
  4. Klarenbeek A., Schuffner W. A. P. Appearance in Holland of Leptospira differing from Weil Strain. Nederlands Tijdschrift voor Geneeskunde, 1933.
  5. Ellis W. A. Control of canine leptospirosis in Europe: time for a change? Vet Rec, 2010.
  6. Ward M. P. Seasonality of canine leptospirosis in the United States and Canada and its association with rainfall. Prev Vet Med, 2002.
  7. Ghneim G. S., Viers J. H., Chomel B. B., et al. Use of a case-control study and geographic information systems to determine environmental and demographic risk factors for canine leptospirosis. Vet Res, 2007
  8. Werts C., Tapping R. I., Mathison J. C., et al. Leptospiral lipopolysaccha-ride activates cells through a TLR2-dependent mechanism. Nat Immunol, 2001.
  9. Meri T., Murgia R., Stefanel P., et al. Regulation of complement activation at the C3-level by serum resistant leptospires. Microb Pathog, 2005.
  10. Levett P. N. Leptospirosis. Clin Microb Rev, 2001.
  11. De Brito T., Menezes L. F., Lima D. M., et al. Immunohistochemical and in situ hybridization studies of the liver and kidney in human leptospirosis. Virchows Archiv, 2006.
  12. Mastrorilli C., Dondi F., Agnoli C., et al. Clinicopathologic features and outcome predictors of Leptospira interrogans Australis serogroup infection in dogs: a retrospective study of 20 cases (2001-2004). J Vet Intern Med, 2007.
  13. Yang H. L., Jiang X. C., Zhang X. Y., et al. Thrombocytopenia in the experimental leptospirosis of guinea pig is not related to disseminated intravascular coagulation. BMC Infect Dis, 2006. 
  14. Major A., Schweighauser A. & Francey T. Increasing incidence of canine leptospirosis in Switzerland. Int J Environ Res Public Health, 2014. 
  15. Nally J. E., Chantranuwat C., Wu X. Y., et al. Alveolar septal deposition of immunoglobulin and complement parallels pulmonary hemorrhage in a guinea pig model of severe pulmonary leptospirosis. Am J Pathol, 2004.
  16. Greenlee J. J., Alt D. P., Bolin C. A., et al. Experimental canine leptospirosis caused by Leptospira interrogans serovars pomona and bratislava. Am J Vet Res, 2005. 
  17. Kohn B., Steinicke K., Arndt G., et al. Pulmonary abnormalities in dogs with leptospirosis. J Vet Intern Med, 2010.
  18. Greene E. C. Leptospirosis. In: Infectious Diseases of the Dog and Cat. 4th Ed. C. E. Greene. Elsevier, pp. 431-447, 2012. 
  19. Schulz B. S., Seybold N., Adamik K. N., et al. Ileocolic intestinal intussus-ception in a dog with leptospirosis. Tierarztliche Praxis Ausgabe K: Kleintiere Heimtiere, pp. 403-405, 2010. 
  20. Townsend W. M., Stiles J. & Krohne S. G. Leptospirosis and panuveitis in a dog. Vet Ophthalmol, 2006. 
  21. Michel E., Kook P. H., Voss K., et al. [Generalized metastatic intestinal and cutaneous calcinosis in a Hovawart puppy with leptospirosis]. Schweiz Arch Tierheilkd, 2011.
  22. Kohn B., Engelbrecht R., Leibord W. Clinical findings, diagnostics and treatment results in primary and secondary immune-mediated thrombocytopenia in the dog. Kleintierpraxis, 2000.
  23. Geisen V., Stengel C., Brem S., et al. Canine leptospirosis infections – clinical signs and outcome with different suspected Leptospira serogroups (42 cases). J Small Anim Pract, 2007. 
  24. Goldstein R. E., Lin R. C., Langston C. E., et al. Influence of infecting serogroup on clinical features of leptospirosis in dogs. J of Vet Intern Med, 2006.
  25. Mastrorilli C., Dondi F., Agnoli C., et al. Clinicopathologic features and outcome predictors of Leptospira interrogans Australis serogroup infection in dogs: a retrospective study of 20 cases (2001-2004). J Vet Intern Med, 2007.
  26. Baumann D. & Fluckiger M. Radiographic findings in the thorax of dogs with leptospiral infection. Vet Radiol Ultrasound, 2001. 
  27. Jane E. Sykes et al. Updated ACVIM consensus statement on leptospirosis in dogs. J Vet Intern Med, 2023
  28. Vieira M. L., Nascimento A. Virulent Leptospira interrogans induce cytotoxic effects in human platelets in vitro through direct interactions. Front Microbiol, 2020. 
  29. Juliette Sone et al. Prospective evaluation of abdominal ultrasonographic findings in 35 dogs with leptospirosis. Vet Radiol Ultrasound, 2018. 
  30. Alejandro Dominguez, Vijayadershan Muppidi, Stephen W. Leslie, Sonu Gupta. Hyperaldosteronism, 2024.
  31. Birnbaum N. et al. Naturally acquired leptospirosis in 36 dogs: serological and clinicopathological features. J Small Anim Pract, 1998.
  32. Rentko V. T., et al. Canine leptospirosis. A retrospective study of 17 cases. J Vet Intern Med, 1992.