Неврологические осложнения после окклюзии портосистемных шунтов. Обзор опубликованных данных и собственный клинический опыт. Часть 1
Интенсивная терапия

Неврологические осложнения после окклюзии портосистемных шунтов. Обзор опубликованных данных и собственный клинический опыт. Часть 1

Автор: Аржаев А. Е., врач ОРИТ Ветеринарной клиники доктора Сотникова, г. Санкт-Петербург.

Введение

За последние 2,5 года в стенах Ветеринарной клиники доктора Сотникова были прооперированы 252 пациента (241 собака, 11 кошек) с портосистемными шунтами. В подавляющем числе случаев (243 пациента) техника хирургического вмешательства заключалась в проведении окклюзии с помощью наложения на шунт амероидного констриктора, в остальных 9 случаях – целлофановой полоски.

Среди прооперированных собак с внепеченочными шунтами (227 пациентов) наиболее частыми осложнениями являлись гипогликемия, панкреатит, сепсис, а также некий комплекс неврологических осложнений, который в зарубежной литературе (в зависимости от степени выраженности отклонений) принято обозначать двумя терминами: PAS (англ. postattenuation seizure syndrome) и PANS (англ. postattenuation neurological signs). Термином PAS обозначают симптоматику, ассоциированную с проявлением судорожного синдрома в послеоперационном периоде, термином PANS – любые отклонения неврологического статуса пациента в послеоперационном периоде, не связанные с гепатоэнцефалопатией. Сама по себе природа гепатоэнцефалопатии (ГЭ) является предметом для споров между ветеринарными специалистами. Значительную роль в развитии ГЭ принято отдавать токсическому действию аммиака. Аммиак выделяется при расщеплении белков, аминокислот, пуринов и пиримидинов. Около половины аммиака, поступающего из кишечника, синтезируется бактериями, а оставшаяся часть является продуктом обмена белков и глутамина. Нарушение цикла мочевины ведет к развитию энцефалопатии. Уменьшение количества мочевины в крови может служить показателем развивающейся гепатоэнцефалопатии. Согласно литературным данным, повышенный уровень аммиака в крови наблюдается у 90% пациентов с ГЭ. Содержание его в головном мозге также может быть увеличено. При пероральном получении солей аммония у некоторых больных может развиться гепатоэнцефалопатия.    

Сама по себе гипераммониемия связана со снижением проведения возбуждения в ЦНС. При ГЭ основные механизмы действия аммиака заключаются в прямом воздействии на мембраны нейронов или на постсинаптическое торможение и в опосредованном нарушении функций нейронов в результате влияния на глутаматергическую систему. Однако у ряда пациентов с признаками гепатоэнцефалопатии, связанной с наличием у них врожденного портосистемного шунта, не отмечалось наличия гипераммониемии63,64, более того, пациенты с дефицитом фермента цикла мочевины при высокой концентрации аммиака в крови не демонстрируют признаки классической ГЭ65. Также было установлено несовершенство корреляции уровня аммиака и степени выраженности симптомов ГЭ66. Отсутствие положительной динамики у пациентов с проявлениями PAS и PANS при проведении стандартного лечения гепатоэнцефалопатии подтверждает тот факт, что данные состояния развиваются по альтернативному сценарию, нежели ГЭ67 . Согласно литературным данным, это создает множество проблем для врачей интенсивной терапии и ассоциировано с достаточно высокой смертностью пациентов (по разным данным от 2040 до 100%34). Вероятно, данный факт в основном связан с непониманием патогенеза развития PAS и PANS.

Этиопатогенез

Есть несколько основных теорий об этиопатогенезе данного состояния.

Согласно первой теории, в качестве основной причины предполагается снижение системных концентраций эндогенных бензодиазепинов. Это предположение имеет много общего с гипотезой, высказанной автором в конце статьи.

 По мнению ряда авторов, данная теория не может объяснить возникновение PANS после частичного лигирования шунта1,2,4,9,13,15,16,18,19,43,46 или в результате его поэтапного закрытия с помощью амероидного констриктора.

Автор статьи полагает, что в Ветеринарной клинике доктора Сотникова накоплено недостаточно данных для утверждения факта развития PANS за счет частичного или постепенного снижения концентраций эндогенных бензодиазепинов. Тем не менее некоторые результаты терапии бензодиазепинами, которых оказалось недостаточно для контроля PAS и PANS в монорежиме, свидетельствуют не в пользу данной теории2,13,17,18,32

К сожалению, специалисты клиники не располагают возможностью отслеживать концентрацию эндогенных бензодиазепинов в ликворе, поэтому поделиться собственными наблюдениями на этот счет (несмотря на приличную выборку клинических случаев) не представляется возможным.

Вторая теория основывается на предположении о том, что к развитию данных синдромов приводит наличие у животного сопутствующего заболевания головного мозга2,13,44. Согласно информации, полученной из небольших ретроспективных обзоров2, пациенты, у которых в предоперационном периоде был отмечен некий неврологический дефицит, а впоследствии развились PAS и PANS, весьма положительно отвечали на стандартную терапию гепатоэнцефалопатии. Однако состав ликвора у двух из трех собак показал признаки незначительного неспецифического воспаления2,4, которое являлось следствием длительных судорог, а у третьей собаки и вовсе был в норме1. Аутопсийные исследования4,20,23,39,44 также не пролили свет на этиологию PAS и PANS, поскольку не было выявлено признаков наличия гидроцефалии при вскрытии пациентов одной группы и признаков некротического энцефалита у животных из другой группы (собак породы мопс)44.

Согласно третьей теории, основным триггером является наличие у пациентов приобретенной энцефалопатии. Причиной тому могут служить три состояния: гипертензия, интраоперационная гипотензия, а также гипоксия/гипоксемия. Однако у четырех пациентов, у которых велась регистрация артериального давления во время проявления постлигатурного судорожного синдрома (англ. postligation seizure syndrome), показатели измерений были в пределах референсных значений2,32.

Интраоперационная гипотензия гипотетически имеет основания для развития последующих патологических изменений головного мозга вследствие вторичной ишемии и некроза нейронов, но ретроспективная оценка групп пациентов, испытавших и не испытавших интраоперационную гипотензию, не выявила статистически важной корреляции (встречаемость PAS/PANS – 8,4% против 7,4% соответственно)39

Поражения головного мозга гипоксической природы, зафиксированные в двух небольших ретроспективных обзорах, скорее, говорят о вторичном повреждении, чем о гипоксии/гипоксемии, лежащей в основе развития данной патологии2,4

В практике специалистов нашей клиники были отмечены поражения гипоксической природы, обнаруженные при МРТ-исследовании у 4 из 20 пациентов (всего исследование проводилось 5 раз), однако данные поражения, очевидно, были вторичными.

Четвертая теория тоже весьма предсказуема и рассматривает в основе развития PAS/PANS периоперационные гипогликемии. Исходя из того, что гипогликемия – одно из наиболее встречаемых осложнений, кажется рациональным предположить ее роль в основе патогенеза пресловутых PAS/PANS1,2,4,46,47. Однако при ретроспективной оценке 75 пациентов с послеоперационными судорогами46 было выявлено, что уровень глюкозы крови (УГК) у 91,9% пациентов был более 3,3 ммоль/л (референсные значения составляют в среднем 3,0–8,0 ммоль/л). Также есть как минимум 4 сообщения о пациентах с PAS, получавших инфузию декстрозы с постоянной скоростью и имевших на момент проявления симптоматики нормальный УГК. Симптомы PAS могут прогрессировать вне зависимости от коррекции гликемического статуса, поэтому данная теория тоже не нашла своего подтверждения1,4,10-13,16,17,32,38,39,44,46

Согласно нашим данным, УГК пациентов, которые столкнулись с PAS в предоперационном периоде на момент хирургического вмешательства и после него, оставался в пределах референсных значений, за исключением одного пациента, судороги у которого развились, тем не менее, на фоне нормогликемии. 

Пятая теория – электролитные нарушения. Различные степени нарушения концентраций электролитов были выявлены у ограниченного числа собак во время проявления PAS2,4,16,25,47. Сообщалось о концентрациях общего кальция от низких до нормальных уровней, по крайней мере, у семи собак, у которых развился PAS, однако ионизированная гипокальциемия была подтверждена только у одной собаки в серии опубликованных случаев2,13,16. Некоторые эпизоды электролитных нарушений были связаны с низкой концентрацией общего кальция, однако внутривенное введение кальция не купировало приступов2,13. Также у некоторых пациентов была выявлена гипокалиемия различной степени тяжести, коррекция которой не привела к нормализации их состояния2,16,46,47. Более того, в большинстве сообщений о случаях PAS отмечалось, что отклонения неврологического статуса у пациентов происходили при нормальном электролитном составе крови12,32,38,46,47

В нашем случае у пациентов электролитный состав крови чаще всего был в норме либо имел клинически незначимые отклонения.

К шестой теории относят представление о том, что причиной PAS/PANS может служить развивающаяся у пациентов портальная гипертензия. Однако было опубликовано несколько сообщений о проявлении PANS в тех случаях, когда производилось интраоперационное измерение портального давления и были соблюдены все рекомендации по лигированию/перекрытию шунта1,2,4,10-12,17,41. У одной пораженной собаки давление в воротной вене, которое измерялось с помощью катетера, установленного in situ в тощей кишке, постоянно находилось в пределах нормы (норма – 5–10 мм рт. ст.). Никаких доказательств наличия портальной гипертензии не было обнаружено у двух пораженных собак, которым была проведена повторная целиотомия на фоне PAS2,4. Также имеется сообщение о сохранении PANS после удаления лигатуры с целью лечения сопутствующей послеоперационной портальной гипертензии11 и еще одно сообщение о развитии PANS после удаления лигатуры10. Аутопсия двух других собак не подтвердила данных о наличии у них портальной гипертензии1.

Интраоперационное измерение давления в портальной вене в нашем случае производилось лишь у двух пациентов с послеоперационными симптомами PAS/PANS. Его результаты находились в пределах референтных значений.

Согласно седьмой теории, в основе природы PAS/PANS может лежать инфекционное заболевание. Всего у двух животных было проведено серологическое исследование на наличие чумы плотоядных, а у одной из собак – бактериологическое исследование ликвора2. Все результаты были отрицательными.

У наших пациентов, столкнувшихся с проблемой послеоперационных судорог, не подозревались основные вирусные инфекционные заболевания, эндемичные для нашего региона, также эти животные были вне подозрений по поводу бактериальных инфекций ЦНС.

Факторы риска

Несмотря на то что ни одна из теорий об этиопатогенезе интересующего нас состояния не подтвердилась, удалось выделить вполне объективные факторы риска развития PAS/PANS. Разберем каждый из них в отдельности.

Первый фактор риска – выраженные признаки гепатоэнцефалопатии в предоперационном периоде. В одном ретроспективном исследовании41 с участием 253 собак наличие ГЭ непосредственно перед операцией было фактором риска развития PANS (соотношение шансов [OR] 2,704, CI 1,057–6,922) и PAS (OR 3,538, CI 1,013–12,363). Заранее зная о риске влияния данного фактора на исход операции, специалисты нашей клиники перед хирургическим вмешательством проводят практически всем животным необходимые манипуляции с целью нормализации их состояния. Лишь один пациент, у которого развился постлигатурный судорожный синдром, был прооперирован до нормализации неврологического статуса. Данное обстоятельство было следствием того, что стандартными методами стабилизировать состояние этого пациента не удалось, а ухудшение его состояния прогрессировало, несмотря на прилагаемые методы интенсивной терапии. 

Второй фактор риска – возраст пациента. В недавнем исследовании увеличение возраста было определено как фактор риска развития PANS (OR 1,476, CI 1,223–1,780) и PAS (OR 1,364, CI 1,082–1,720)41, что подтверждает результаты наблюдений нескольких предыдущих исследователей2,4, 13,23,41,44,46,47.

Все наши пациенты, у которых развились PAS/PANS, были в возрасте старше 3,5 лет.

Третий фактор риска – морфология шунта. Не было выявлено статистически значимой разницы между группами пациентов с внепеченочными (частота встречаемости PAS/PANS 0–18,2%)1,2,4,7,10,11,13,15,18,19,23,25,27-29,31,32,34,37,39,41,44-46,48-50 и внутрипеченочными (частота встречаемости PAS/PANS 0–14,3%)7,9,19,22,26,40,41,43 шунтами. Тем не менее было обнаружено, что важную роль может играть морфология внепеченочного шунта. Так, в одном ретроспективном исследовании было выявлено, что собаки с портоазигональными шунтами подвергаются большему риску развития PANS, чем собаки с портокавальными шунтами13. Однако животные с портоазигональными шунтами, как правило, были старше на момент постановки диагноза, чем животные с портокавальными шунтами, и, возможно, основным фактором стал именно возраст пациентов, а не субморфология шунта. 

В нашем случае из 20 пациентов с PAS/PANS только у двух пациентов шунт был портоазигональным, а у остальных 18 – портокавальным.


Четвертый фактор риска – породная предрасположенность, однако данное предположение основано на выборке небольших популяций. К группе риска были отнесены собаки следующих пород: джек-рассел-терьер21, мопс10,13,44 и мальтийская болонка1,13.


Наравне с подтвержденными факторами риска были выделены и исключенные факторы риска:

  • выбор концепции хирургического лечения шунта (частичное/неполное или полное лигирование – использование амероидного констриктора или целлофановой полоски);
  • наличие в предоперационном периоде неврологических симптомов или судорожного синдрома, не ассоциированного с гепатоэнцефалопатией;
  • длительность хирургического вмешательства и анестезии;
  • изменения натриемии/осмолярности в послеоперационном периоде.
  • Не будем останавливаться на их разборе более подробно, поскольку это исключенные факторы риска.

Профилактика

Разумеется, при столкновении с этой патологией (PAS/PANS) возникает непреодолимое желание профилактировать ее развитие. С этой целью применялись три противосудорожных препарата: леветирацетам, фенобарбитал и бромид калия.

Леветирацетам. В одном ретроспективном исследовании отмечалось, что ни одна из 42 собак, получавших до операции леветирацетам в дозе 20 мг/кг каждые 8 ​​часов в течение как минимум 24 часов, не испытала PANS, тогда как у четырех (4,8%) из 84 собак, не получавших леветирацетам, развился PAS. Однако это наблюдение не было подтверждено четырьмя последующими более крупными ретроспективными исследованиями39,41,46,48. В одном из них41 сообщалось о том, что у 6 (11,1%) из 54 собак, получавших леветирацетам в профилактических целях (20 мг/кг каждые 8 ​​суток в течение ≥ 24 ч до операции и ≥ 5 дней после операции), развился PANS, тогда как в группе пациентов, не получавших леветирацетам, PANS наблюдался у 22 (11,1%) из 199 собак. Также была обнаружена аналогичная частота встречаемости PAS среди собак, которые получали или не получали леветирацетам (5,6% и 4,5% соответственно)41.

В другом крупном ретроспективном исследовании частота встречаемости PANS также статистически значимо не отличалась среди собак, которые получали (11,2%) или не получали (6,7%) леветирацетам в дозе ≥ 15 мг/кг каждые 8 ​​в течение ≥ 24 ч до операции или 60 мг/кг внутривенно нагрузочной дозой в периоперационном периоде с последующим введением ≥ 15 мг/кг каждые 8 часов после операции46. Ограничениями всех опубликованных исследований, описывающих профилактическое лечение леветирацетамом, являются их ретроспективный характер и отсутствие рандомизации и стандартизации лечения34,39,41,46-48.

Фенобарбитал. Данные всех опубликованных исследований не подтвердили тот факт, что профилактическое лечение фенобарбиталом снижает частоту встречаемости PANS. Однако в одном ретроспективном исследовании было выявлено, что подобное лечение может уменьшать его тяжесть13. В этом исследовании профилактическое применение фенобарбитала (5–10 мг/кг до индукции с последующим введением 3–5 мг/кг каждые 12 часов в течение 3 недель после операции) не привело к значительному снижению частоты PANS (6,5%) по сравнению с контрольной группой (15,5%). Тем не менее ни у одной из собак, получавших фенобарбитал, не отмечалась генерализация судорожной симптоматики. Измерение концентрации фенобарбитала в сыворотке крови производилось только у одного из всех пациентов, у которого развился PANS, и этот показатель был в пределах референтных значений. 

Бромид калия. Исследования, касающиеся применения данного препарата с обозначенной для нас целью, весьма скудные23,26. Внимание заслуживает всего одна статья – ретроспективный обзор 168 историй болезни пациентов, проходивших хирургическое лечение внепеченочного портосистемного шунта. PANS развился у 4 из 48 собак (8,3%) в группе, получавшей бромид калия до операции (44–100 мг/кг каждые 24 часа в течение как минимум двух недель). В группе собак, не получавших бромид калия, PANS развился у 4 из 120 собак (3,3%). Однако в данном исследовании не было предоставлено никакой информации относительного того, продолжался ли прием бромида калия в послеоперационном периоде. 

Продолжение в следующем номере

Литература:
  1.  Mathews K, Gofton N. Congenital extrahepatic portosystemic shunt occlusion in the dog: gross observations during surgical correction. J Am Anim Hosp Assoc. 1988; 24: 387-394.
  2. Hardie EM, Kornegay JN, Cullen JM. Status epilepticus after ligation of portosystemic shunts. Vet Surg. 1990; 19(6): 412- 417.
  3. Hardie E, Kornegay JN, Cullen JM. Successful treatment of status epilepticus following operation for portosystemic shunt. Vet Surg. 1990; 44: 67.
  4. Matushek K, Bjorling D, Mathews K. Generalized motor seizures after portosystemic shunt ligation in dogs: five cases (1981-1988). J Am Vet Med Assoc. 1990; 196(12): 2014-2017.
  5. Komtebedde J, Forsyth SF, Breznock EM, Koblik PD. Intrahepatic portosystemic venous anomaly in the dog perioperative management and complications. Vet Surg. 1991; 20(1): 37-42.
  6. Hottinger HA, Walshaw R, Hauptman JG. Long-term results of complete and partial ligation of congenital portosystemic shunts in dogs. Vet Surg. 1995; 24(4): 331-336.
  7. Simpson KW, Meyer DJ, Boswood A, White RN, Maskell IE. Iron status and erythrocyte volume in dogs with congenital portosystemic vascular anomalies. J Vet Intern Med. 1997; 11(1): 14-19.
  8. Tobias KM, Besser TE. Evaluation of leukocytosis, bacteremia, and portal vein partial oxygen tension in clinically normal dogs and dogs with portosystemic shunts. J Am Vet Med Assoc. 1997; 211(6): 715-718.
  9. White RN, Burton CA, McEvoy FJ. Surgical treatment of intrahepatic portosystemic shunts in 45 dogs. Vet Rec. 1998; 142(14): 358-365.
  10. Youmans KR, Hunt GB. Cellophane banding for the gradual attenuation of single extrahepatic portosystemic shunts in eleven dogs. Aust Vet J. 1998; 76(8): 531-537.
  11. Hunt GB, Hughes J. Outcomes after extrahepatic portosystemic shunt ligation in 49 dogs. Aust Vet J. 1999; 77(5): 303-07.
  12. Heldmann E, Holt DE, Brockman DJ, Brown DC, Perkowski SZ. Use of propofol to manage seizure activity after surgical treatment of portosystemic shunts. J Small Anim Pract. 1999; 40(12): 590-594.
  13. Tisdall PLC, Hunt GB, Youmans KR, Malik R. Neurological dysfunction in dogs following attenuation of congenital extrahepatic portosystemic shunts. J Small Anim Pract. 2000; 41(12): 539-546.
  14. Wolschrijn CF, Mahapokai W, Rothuizen J, Meyer HP, van Sluijs FJ. Gauged attenuation of congenital portosystemic shunts: results in 160 dogs and 15 cats. Vet Q. 2000; 22(2): 94-98.
  15. Murphy ST, Ellison GW, Long M, Van Gilder J. A comparison of the ameroid constrictor versus ligation in the surgical management of single extrahepatic portosystemic shunts. J Am Anim Hosp Assoc. 2001; 37(4): 390-396.
  16. Yool DA, Kirby BM. Neurological dysfunction in three dogs and one cat following attenuation of intrahepatic portosystemic shunts. J Small Anim Pract. 2002; 43(4): 171-176.
  17. Connery NA, McAllister H, Skelly C, Pawson P, Bellenger CR. Cellophane banding of congenital intrahepatic portosystemic shunts in two Irish wolfhounds. J Small Anim Pract. 2002; 43(8): 345-349.
  18. Hurn SD, Edwards GA. Perioperative outcomes after three different single extrahepatic portosystemic shunt attenuation techniques in dogs: partial ligation, complete ligation and ameroid constrictor placement. Aust Vet J. 2003; 81(11): 666-670.
  19. Winkler JT, Bohling MW, Tillson DM, Wright JC, Ballagas AJ. Portosystemic shunts: diagnosis, prognosis, and treatment of 64, cases (1993-2002). J Am Anim Hosp Assoc. 2003; 39(2): 169-185.
  20. Kummeling A, Van Sluijs FJ, Rothuizen J. Prognostic implications of the degree of shunt narrowing and of the portal vein diameter in dogs with congenital portosystemic shunts. Vet Surg. 2004; 33(1): 17-24.
  21. Hunt GB, Kummeling A, Tisdall PLC, et al. Outcomes of cellophane banding for congenital portosystemic shunts in 106 dogs and 5 cats. Vet Surg. 2004; 33(1): 25-31.
  22. Kyles AE, Gregory CR, Adin CA. Re-evaluation of a portocaval venograft without an ameroid constrictor as a method for controlling portal hypertension after occlusion of intrahepatic portocaval shunts in dogs. Vet Surg. 2004; 33(6): 691-698.
  23. Mehl ML, Kyles AE, Hardie EM, et al. Evaluation of ameroid ring constrictors for treatment for single extrahepatic portosystemic shunts in dogs: 168 cases (1995-2001). J Am Vet Med Assoc. 2005; 226(12): 2020-2030.
  24. Lee KCL, Lipscomb VJ, Lamb CR, Gregory SP, Guitian J, Brockman DJ. Association of portovenographic findings with outcome in dogs receiving surgical treatment for single congenital portosystemic shunts: 45 cases (2000-2004). J Am Vet Med Assoc. 2006; 229(7): 1122-1129.
  25. Frankel D, Seim H, MacPhail C, Monnet E. Evaluation of cellophane banding with and without intraoperative attenuation for treatment of congenital extrahepatic portosystemic shunts in dogs. J Am Vet Med Assoc. 2006; 228(9): 1355-1360.
  26. Mehl ML, Kyles AE, Case JB, Kass PH, Zwingenberger A, Gregory CR. Surgical management of left-divisional intrahepatic portosystemic shunts: outcome after partial ligation of, or ameroid ring constrictor placement on, the left hepatic vein in twenty-eight dogs (1995-2005). Vet Surg. 2007; 36(1): 21-30.
  27. Landon BP, Abraham LA, Charles JA. Use of transcolonic portal scintigraphy to evaluate efficacy of cellophane banding of congenital extrahepatic portosystemic shunts in 16 dogs. Aust Vet J. 2008; 86(5): 169-179.
  28. Worley DR, Holt DE. Clinical outcome of congenital extrahepatic portosystemic shunt attenuation in dogs aged five years and older: 17 cases (1992-2005). J Am Vet Med Assoc. 2008; 232(5): 722-727.
  29. Doran IP, Barr FJ, Hotston Moore A, Knowles TG, Holt PE. Liver size, bodyweight, and tolerance to acute complete occlusion of congenital extrahepatic portosystemic shunts in dogs. Vet Surg. 2008; 37(7): 656-662.
  30. Torisu S, Washizu M, Hasegawa D, Orima H. Measurement of brain trace elements in a dog with a portosystemic shunt: relation between hyperintensity on T1-weighted magnetic resonance images in lentiform nuclei and brain trace elements. J Vet Med Sci. 2008; 70(12): 1391-1393.
  31. Cariou MP, Lipscomb VJ, Hughes D, Brodbelt D, Brockman DJ. Plasma lactate concentrations and blood gas values in dogs undergoing surgical attenuation of a single congenital portosystemic shunt. Vet Rec. 2009; 165(8): 226-229.
  32. Gommeren K, Claeys S, de Rooster H, Hamaide A, Daminet S. Outcome from status epilepticus after portosystemic shunt attenuation in 3 dogs treated with propofol and phenobarbital. J Vet Emerg Crit Care. 2010; 20(3): 346-351.
  33. Seki M, Asano K, Sakai M, et al. Serum hyaluronic acid in dogs with congenital portosystemic shunts. J Small Anim Pract. 2010; 51(5): 260-263.
  34. Fryer KJ, Levine JM, Peycke LE, Thompson JA, Cohen ND. Incidence of postoperative seizures with and without levetiracetam pretreatment in dogs undergoing portosystemic shunt attenuation. J Vet Intern Med. 2011; 25(6): 1379-1384.
  35. Lee KCL, Winstanley A, House J V, et al. Association between hepatic histopathologic lesions and clinical findings in dogs undergoing surgical attenuation of a congenital portosystemic shunt: 38 cases (2000-2004). J Am Vet Med Assoc. 2011; 239(5): 638- 645.
  36. Weisse C, Berent AC, Todd K, Solomon JA, Cope C. Endovascular evaluation and treatment of intrahepatic portosystemic shunts in dogs: 100 cases (2001-2011). J Am Vet Med Assoc. 2014; 244(1): 78-94.
  37. Kraun MB, Nelson LL, Hauptman JG, Nelson NC. Analysis of the relationship of extrahepatic portosystemic shunt morphology with clinical variables in dogs: 53 cases (2009-2012). J Am Vet Med Assoc. 2014; 245(5): 540-549.
  38. Heidenreich DC, Giordano P, Kirby BM. Successful treatment of refractory seizures with phenobarbital, propofol, and medetomidine following congenital portosystemic shunt ligation in a dog. J Vet Emerg Crit Care. 2016; 26(6): 831-836.
  39. Brunson BW, Case JB, Ellison GW, et al. Evaluation of surgical outcome, complications, and mortality in dogs undergoing preoperative computed tomography angiography for diagnosis of an extrahepatic portosystemic shunt: 124 cases (2005-2014). Can Vet J. 2016; 57(1): 59-64.
  40. Case JB, Marvel SJ, Stiles MC, et al. Outcomes of cellophane banding or percutaneous transvenous coil embolization of canine intrahepatic portosystemic shunts. Vet Surg. 2018; 47: O59-O66.
  41. Strickland R, Tivers MS, Adamantos SE, Harcourt-Brown TR, Fowkes RC, Lipscomb VJ. Incidence and risk factors for neurological signs after attenuation of single congenital portosystemic shunts in 253 dogs. Vet Surg. 2018; 47(6): 745-755.
  42. Van den Bossche L, van Steenbeek FG, Weber MF, et al. Genome-wide based model predicting recovery from portosystemic shunting after liver shunt attenuation in dogs. J Vet Intern Med. 2018; 32(4): 1343-1352.
  43. Tivers MS, Lipscomb VJ, Bristow P, Brockman DJ. Intrahepatic congenital portosystemic shunts in dogs: short- and long-term outcome of suture attenuation. J Small Anim Pract. 2018; 59(4): 201-210.
  44. Wallace ML, MacPhail CM, Monnet E. Incidence of postoperative neurologic complications in pugs following portosystemic shunt attenuation surgery. J Am Anim Hosp Assoc. 2018; 54(1): 46-49.
  45. Traverson M, Lussier B, Huneault L, Gatineau M. Comparative outcomes between ameroid ring constrictor and cellophane banding for treatment of single congenital extrahepatic portosystemic shunts in 49 dogs (1998-2012). Vet Surg. 2018; 47(2): 179-187.
  46. Mullins RA, Sanchez Villamil C, de Rooster H, et al. Effect of prophylactic treatment with levetiracetam on the incidence of postattenuation seizures in dogs undergoing surgical management of single congenital extrahepatic portosystemic shunts. Vet Surg. 2019; 48(2): 164-172.
  47. Mullins RA, Sanchez Villamil C, Selmic LE, et al. Prognostic factors for short-term survival of dogs that experience postattenuation seizures after surgical correction of single congenital extrahepatic portosystemic shunts: 93 cases (2005-2018). Vet Surg. 2020; 49(5): 958-970.
  48. Otomo A, Singh A, Jeong J, et al. Long-term clinical outcomes of dogs with single congenital extrahepatic portosystemic shunts attenuated with thin film banding or ameroid ring constrictors. Vet Surg. 2020; 49(3): 436-444.
  49. Vallarino N, Pil S, Devriendt N, et al. Diagnostic value of blood variables following attenuation of congenital extrahepatic portosystemic shunt in dogs. Vet Rec. 2020; 187(7): 48.
  50. Matiasovic M, Chanoit GPA, Meakin LB, Tivers MS. Outcomes of dogs treated for extrahepatic congenital portosystemic shunts with thin film banding or ameroid ring constrictor. Vet Surg. 2020; 49(1): 160-171.
  51. Aronson LR, Gacad RC, Kaminsky-Russ K, Gregory CR, Mullen KD. Endogenous benzodiazepine activity in the peripheral and portal blood of dogs with congenital portosystemic shunts. Vet Surg. 1997; 26(3): 189-194.
  52. Gow AG, Marques AIC, Yool DA, Duncan A, Mellanby RJ. Whole blood manganese concentrations in dogs with congenital portosystemic shunts. J Vet Intern Med. 2010; 24(1): 90-96.
  53. Hazell AS, Desjardins P, Butterworth RF. Chronic exposure of rat primary astrocyte cultures to manganese results in increased binding sites for the “peripheral-type” benzodiazepine receptor ligand 3H-PK 11195. Neurosci Lett. 1999; 271(1): 5-8.
  54. Torisu S, Washizu M, Hasegawa D, Orima H. Brain magnetic resonance imaging characteristics in dogs and cats with congenital portosystemic shunts. Vet Radiol Ultrasound. 2005; 46(6): 447-451.
  55. Tivers MS, Handel I, Gow AG, Lipscomb VJ, Jalan R, Mellanby RJ. Hyperammonemia and systemic inflammatory response syndrome predicts presence of hepatic encephalopathy in dogs with congenital portosystemic shunts. PLoS One. 2014; 9(1): e82303.
  56. Or M, Peremans K, Martlé V, et al. Regional cerebral blood flow assessed by single photon emission computed tomography (SPECT) in dogs with congenital portosystemic shunt and hepatic encephalopathy. Vet J. 2017; 220: 40-42.
  57. Holford AL, Tobias KM, Bartges JW, Johnson BM. Adrenal response to adrenocorticotropic hormone in dogs before and after surgical attenuation of a single congenital portosystemic shunt. J Vet Intern Med. 2008; 22(4): 832-838.
  58. Jalan R, Shawcross D, Davies N. The molecular pathogenesis of hepatic encephalopathy. Int J Biochem Cell Biol. 2003; 35(8): 1175-1181.
  59. Williams A, Gow A, Kilpatrick S, et al. Astrocyte lesions in cerebral cortex and cerebellum of dogs with congenital ortosystemic shunting. J Vet Sci. 2020; 21(3): e44.
  60. Wallace ML, Ellison GW, Giglio RF, et al. Gradual attenuation of a congenital extrahepatic portosystemic shunt with a self-retaining polyacrylic acid-silicone device in 6 dogs. Vet Surg. 2018; 47(5): 722-728.
  61. Moore SA, Muñana KR, Papich MG, Nettifee-Osborne J. Levetiracetam pharmacokinetics in healthy dogs following oral administration of single and multiple doses. Am J Vet Res. 2010; 71(3): 337-341.
  62. Moore S, Muñana KR, Papich MG, Nettifee-Osborne JA. The pharmacokinetics of levetiracetam in healthy dogs concurrently receiving phenobarbital. J Vet Pharmacol Ther. 2011; 34(1): 31-34.
  63. Muñana KR, Nettifee-Osborne JA, Papich MG. Effect of chronic administration of phenobarbital, or bromide, on pharmacokinetics of levetiracetam in dogs with epilepsy. J Vet Intern Med. 2015; 29(2): 614-619.
  64. Berent A, Tobias KM. Hepatic vascular anomalies. In: SA Johnston, KM Tobias, eds. Veterinary Surgery: Small Animal. 2nd ed. Elsevier Saunders; 2018:1852-1886.
  65. Janus P Ong, Anjana Aggarwal, Derk Krieger, Kirk A Easley, Matthew T Karafa et al. Correlation between ammonia levels and the severity of hepatic encephalopathy. Am J Med. 2003 Feb 15; 114(3):188-93
  66. Majed Odeh, Edmond Sabo, Isaac Srugo, Arie Oliven. Relationship between tumor necrosis factor-alpha and ammonia in patients with hepatic encephalopathy due to chronic liver failure. Am J Med. 2005; 37(8):603-12.
  67. M Zandvliet, J Rothuizen.Transient hyperammonemia due to urea cycle enzyme deficiency in Irish wolfhounds. J Vet Intern Med/ Mar-Apr 2007;21(2):215-8
  68. M Odeh. Pathogenesis of hepatic encephalopathy: the tumour necrosis factor-alpha theory, 2007.
  69. Rhiannon Strickland, Michael S Tivers, Robert C Fowkes, Victoria J Lipscomb. Incidence and risk factors for neurological signs after attenuation of a single congenital portosystemic shunt in 50 cats, 2020.