Односторонняя факоэмульсификация у зоопаркового африканского слона (Loxodonta africana)
Офтальмология

Односторонняя факоэмульсификация у зоопаркового африканского слона (Loxodonta africana)

Автор: Katherine E. L. Manchip1, Ghislaine Sayers2, John C. M. Lewis3 and James W. Carter1.
  1. South Devon Veterinary Hospital, The Old Cider Works, Abbotskerswell TQ12 5GH, UK 
  2. Paignton Zoo Environmental Park, Paignton TQ4 7EU, UK 
  3. International Zoo Veterinary Group, Station House, Keighley BD21 4NQ, UK 
Перевод: Васильева Е.В., ветеринарный врач-офтальмолог, Ветеринарная клиника доктора Сотникова, г. Санкт-Петербург.

Резюме

Справочная информация: в данной статье описаны клиническая картина, хирургический протокол, послеоперационный уход и данные долгосрочного наблюдения за африканским слоном (Loxodonta Africana) с односторонней катарактой.
Клинический случай: 42-летняя самка африканского слона была осмотрена ветеринарным офтальмологом по причине дискомфорта и ухудшения зрения в левом глазу. Предхирургическое лечение включало местные противовоспалительные препараты в течение 20 дней до операции. Была проведена бимануальная факоэмульсификация с использованием общей анестезии, искусственную линзу не устанавливали. Через 9 дней после операции у пациента были хорошо выражены зрачковый рефлекс, реакция на угрожающий жест и на ослепляющий свет. Состояние глазного дна при офтальмоскопии было нормальным. Последующее наблюдение осуществлялось на протяжении 5 лет: с момента операции до настоящего времени. 
Вывод: Несмотря на афакию, в данном случае был достигнут хороший результат по восстановлению зрения. Насколько известно авторам статьи, других опубликованных работ о факоэмульсификации у зоопарковых слонов на текущий момент нет.
Ключевые слова: африканский слон, катаракта, Loxodonta africana, факоэмульсификация.

Введение

Слоны – короли животного мира. Эти высокоподвижные млекопитающие с их необычной анатомией, крепкими семейными узами и долголетием были источником восхищения на протяжении многих лет. Раздел территории обитания, перекрытие миграционных коридоров и браконьерство в связи с международной торговлей слоновой костью являются ключевыми угрозами для выживания вида, который в настоящее время уже числится как "уязвимый" в списке Международного союза охраны природы (англ. IUCN Red list)13. Несмотря на долгие и сложные взаимоотношения между людьми и слонами, содержащимися в неволе, сведения об их содержании и лечении остаются отрывочными. В литературе есть некоторая информация об анатомии и физиологии глаза слона, но публикаций о глазных заболеваниях и их лечении относительно мало. Размер глаза у слона невелик в сравнении с размерами его тела: средняя осевая длина составляет 35 мм у африканских слонов и 38,75 мм – у азиатских слонов16,22. Нижнее веко более развито, чем верхнее, и более подвижно. Как и у кошек, у слонов нет истинных ресниц, но имеются большие дополнительные ресницы длиной до 110 мм, расположенные над глазом17,23. Уникальной особенностью является отсутствие слезного аппарата (системы слезоотведения. – Прим. пер.). Слезная жидкость направляется в область медиального канта, откуда она вытекает на кожу и течет вдоль желоба, известного как медиальный канальный желоб7,16,22. Кроме того, в отличие от многих других наземных животных у слонов выделяют выраженную Боуменову оболочку (слой роговицы. – Прим. пер.)9. Также для этих животных характерен фиброзный тип тапетума, похожий по структуре и функциям на тапетум других копытных. Глазное дно у них паурангиотическое19,20. Топографическое картирование сетчатки у африканских слонов выявило горизонтальную полосу повышенной плотности ганглионарных клеток, расположенную ниже диска зрительного нерва (как у других видов млекопитающих), и дополнительную верхне-височную область повышенной плотности ганглионарных клеток, которая считается необходимой для того, чтобы контролировать движения хобота20
Формирование катаракты было зарегистрировано у африканских и у азиатских слонов (как у диких, так и у содержащихся в неволе)8,12,14,18. В данной статье описана хирургия катаракты методом факоэмульсификации у самки африканского слона (Loxodonta africana).

Клинический случай

Анамнез
42-летняя самка африканского слона L. africana весом 4100 кг была осмотрена ветеринарным офтальмологом по причине дискомфорта и ухудшения зрения в левом глазу. Контроль за состоянием глаза осуществлялся на протяжении 3 предыдущих лет по причине прогрессирования катаракты, и пациент уже получал местно 0,5%-ный раствор кеторолака трометамола (Acular; Allergan, Marlow, UK) 2 раза в день. Персонал, осуществлявший уход за животным, заметил ухудшение зрения у слонихи примерно за 2 месяца до повторного осмотра ветеринарным офтальмологом, а также учащенное моргание, покраснение, эпифору и песок вокруг глаза (рис. 1). Предположили, что слониха бросала песок в глаз, чтобы облегчить дискомфорт. Кратность использования местных препаратов была увеличена до 3 раз в день с последующим пероральным приемом флуниксина меглумина (Equinixin; Norbrook Laboratories Ltd. Newry, UK) в дозе 1,02 мг/кг 1 раз в день. Правый глаз был энуклеирован 3 года назад из-за неконтролируемой глаукомы, вторичной по отношению к хрусталик-индуцированному увеиту. На тот момент владелец выбрал энуклеацию, а не хирургию катаракты. Слониха проживала в одном и том же парке в течение 35 лет и была клинически здорова. 
Офтальмологическое обследование
Офтальмологическое обследование без использования седации было проведено Джеймсом Картером (James Carter), сертифицированным специалистом ветеринарной офтальмологии Королевской коллегии ветеринарных хирургов (англ. Royal College of Veterinary Surgeons; RCVS). Слониха была обучена подходить к ограждению вольера и опускать голову так, чтобы ее глаз был на уровне глаз врача. Персонал мог подойти к ней снаружи вольера, чтобы провести обследование (рис. 2). Слониха также была обучена наклонять голову таким образом, чтобы было удобнее применять глазные капли. Были проведены щелевая биомикроскопия (Keeler PSL Classic; Keeler Ltd, Windsor, UK) и прямая офтальмоскопия (Keeler Practitioner direct ophthalmoscope; Keeler Ltd, Windsor, UK). Нейроофтальмологическое обследование выявило отсутствующий рефлекс угрозы, но рефлекс на ослепляющий свет и прямой зрачковый рефлекс были нормальными. При офтальмологическом обследовании были обнаружены обилие экссудата в конъюнктивальном мешке и гиперемия конъюнктивы. Роговица была прозрачной и здоровой, без помутнений или дефектов, флюоресцеиновый тест был отрицательным. На момент осмотра не было выявлено помутнения жидкости передней камеры или других признаков воспаления переднего сегмента глаза. Зрачок был круглым и среднего размера, были обнаружены передняя и задняя субкапсулярная катаракта с распространением в кору хрусталика (рис. 3). Обследование заднего сегмента не представлялось возможным из-за патологии хрусталика. Несмотря на подготовительные тренировки животного, попытки измерить внутриглазное давление тонометром (ICare® Tonovet tonometer, Tiolat, Helsinki, Finland) оказались безуспешными из-за постоянных и произвольных движений третьего века при перемещении тонометра в сторону глаза. Попытка провести слезный тест Ширмера также потерпела неудачу.
Ультразвуковое исследование глаза
УЗИ глаза проводили, предварительно обезболив поверхность роговицы проксиметакаином (Minims Proxymetacaine Hydrochloride 0.5%, Bausch & Lomb UK Limited). Ультрасонография в B-режиме была проведена с помощью датчика 8 МГц для оценки потенциальных аномалий заднего сегмента. Переднезадний размер хрусталика составлял 12,5 мм, а экваториальный – 19,5 мм. Расстояние от переднего полюса хрусталика до сетчатки составило 34,5 мм.

Предоперационная подготовка и тренировка

Дексаметазон + полимиксин B + неомицин в виде 0,1%-ной суспензии(Maxitrol®; Alcon laboratories) использовали местно 4 раза в день, кратность местного применения кеторолака трометамола (Acular; Allergan, Marlow, UK) увеличили до 4 раз в день, такое лечение осуществлялось в течение 20 дней перед операцией. Тренировки по подготовке к внутримышечной инъекции эторфина заключались в обучении пациента подпускать персонал к ягодичной области, чтобы проводить ее очищающую обработку. Размеры пациента и введение ему эторфина могли иметь значительные последствия для здоровья и безопасности персонала, поэтому тренировки необходимо было довести до совершенства ко дню операции, а также спланировать материально-техническое оснащение.
В день операции использовали местное введение атропина (Minims Atropine sulfate 1%; Bausch & Lomb UK Limited) двукратно с интервалом в 30 минут до индукции. Также слонихе дали немного пищи вместе с дозой флуниксина меглумина (Equinixin; Norbrook Laboratories Ltd. Newry, UK). 

Анестезиологическое сопровождение хирургии

Пациент был обездвижен с помощью 10,045 мг гидрохлорида эторфина и 41 мг ацепромазина малеата (4,1 мл Immobilon; Novartis Animal Health UK Limited), введенными внутримышечно в ягодичную область. Животное сразу разместили в правом латеральном положении, чтобы в дальнейшем не возникло необходимости менять его позу (рис. 4A). Была проведена назальная интубация с использованием эндотрахеальных трубок диаметром 18 и 22 мм с манжетой, а просвет глотки изолировали полотенцами. Анестезия поддерживалась смесью изофлюрана с кислородом, подававшейся через 2 дыхательных контура для крупных животных, каждый из которых был соединен с двумя 30-литровыми дыхательными резервными мешками (рис. 4B).
Ретробульбарную анестезию осуществляли посредством четырехточечной блокады нервов с использованием 10 мл 0,5%-ного инъекционного раствора бупивакаина(Marcain; AstraZeneca, UK). Внутривенный доступ был осуществлен с помощью катетеров 12G, введенных в сосуды обоих ушей, и на протяжении всей процедуры пациент получал внутривенно раствор Хартмана. В анестезиологический мониторинг входили пульсоксиметрия, электрокардиография и капнография. Перед операцией внутривенно ввели марбофлоксацин 2 мг/кг (Forcyl; Vetoquinol, UK). В конце операции все мониторинговое оборудование было убрано, а пациент был экстубирован. В качестве антагониста эторфина подкожно ввели 1 мг дипренорфина (Revivon; C-Veterinary Products, Leyland, UK)и еще 12,3 мг ввели внутривенно, после чего внутривенный катетер был удален. Между экстубацией и подъемом пациента кислород доставлялся в легкие через клапан подачи кислорода (предназначенный для применения у лошадей) на вдохе для поддержания значения SpO2, превышающего 95%.

Восстановление после анестезии было стандартным за исключением легкой дисфории. Тонус хобота восстановился через несколько часов после операции, и в тот же вечер слониха могла есть и реагировала на команды.

Факоэмульсификация

Для лучшего доступа к глазу использовался лошадиный векорасширитель по Кастровьехо (рис. 5A). С помощью портативного микроскопа (Leica WildM-690 Microscope, рис. 4А) были наложены три шва-держалки с использованием шелкового плетеного шовного материала (7-0, Mersilk®; Ethicon Inc., Somerville, NJ). Боковой парацентез был осуществлен с использованием скальпеля(Beaver scalpel blade 69) и ножа-кератома 3,2 мм (копьевидного), в переднюю камеру глаза был введен трипановый синий, чтобы окрасить переднюю капсулу хрусталика. Передняя камера промывалась сбалансированным соляным раствором, содержащим адреналин (1:10 000) и гепарин (2 МЕ/мл), что увеличивало диаметр зрачка. Поддержание формы передней камеры происходило за счет использования вискоэластиков (2%-го раствора натрия гиалуроната [Acrivet Syn] и 2%-ного раствора гидроксипропилметилцеллюлозы  [Acrivet Viscose, S&V Technologies, Acrivet Veterinary Division, Hennigsdorf]), которые дополнительно увеличили диаметр зрачка. Тоннельный разрез роговицы был сделан приблизительно на 90° правее бокового парацентеза. Для первоначального разреза передней капсулы хрусталика использовали тот же нож-кератом, которым был сделан боковой парацентез, затем разрез капсулы был расширен с помощью ножниц по Ваннасу, а непрерывный передний капсулорексис был завершен с использованием пинцета типа Утрата. В результате был достигнут целевой диаметр, составляющий приблизительно 10 мм. Бимануальная факоэмульсификация была проведена с использованием портативного факоэмульсификатора Acrivet Alexos (Salt Lake City, UT) с иглой длиной 23 мм и диаметром 0,9 мм, а остаточный материал коры хрусталика был удален с помощью автоматической ирригации/аспирации. Общее время использования ультразвука составило 416 секунд. Вискодиссекция 2%-ным раствором гиалуроната натрия (Acrivet Viscose; S&V Technologies, Acrivet Veterinary Division, Hennigsdorf) применялась для перемещения фрагментов хрусталика ближе к игле факоэмульсификатора, чтобы их можно было эмульгировать и аспирировать. Некоторые мелкие фрагменты хрусталика, которые сложно было уловить иглой факоэмульсификатора, были удалены с помощью пинцета типа Утрата (рис. 5B). Во время операции произошел разрыв задней капсулы хрусталика, и интраокулярная линза не была имплантирована. Тоннельный разрез роговицы был закрыт с помощью непрерывного обратного пиловидного шва с использованием полиглактина 910 размером 8-0 (Vicryl®; Ethicon Inc., Somerville, NJ, USA), а боковой парацентез был ушит простым узловым швом с использованием того же материала (рис. 5C).
Послеоперационный период
В качестве послеоперационной терапии использовали местно 0,1%-ную суспензию комбинированного препарата дексаметазон + полимиксин B + неомицин (Maxitrol®; Alcon laboratories, UK), и кеторолака трометамол (Acular; Allergan, Marlow, UK) 4 раза в день в течение 9 дней; марбофлоксацин (внутрь) в дозе 1 мг/кг (Marbocyl®; Vetoquinol, UK) и флуниксина меглумин – 1 мг/кг (Equinixin; Norbrook Laboratories Ltd. Newry, UK) также в течение 9 дней после операции. 
На протяжении последующих 3 месяцев осуществлялась коррекция лечения: снижали постепенно использование лекарств, а затем прекратили их применение. 
Вскоре после операции слониха опять начала бросать песок в глаз, поэтому доступ к песочнице был ограничен в течение первых 24 часов. После этого не было отмечено никаких признаков того, что пациента беспокоит область операции.
В первые 24 часа после операции присутствовали легкая гиперемия конъюнктивы и опалесценция внутриглазной жидкости. Рефлекс на ослепляющий свет был выражен хорошо, а реакция на угрожающий жест – плохо, отсутствовал зрачковый рефлекс.
Через 72 часа после операции появилась реакция на угрожающий жест, и слониха начала отслеживать движение палки с мишенью, но не могла прикоснуться к мишени хоботом. Рефлекс на ослепляющий свет был положительным, а зрачок – миотичным. В области швов наблюдался небольшой отек роговицы (рис. 6).
Через 9 дней после операции у пациента были хорошо выражены реакция на угрожающий жест, рефлекс на ослепляющий свет и зрачковый рефлекс. Офтальмоскопическая картина глазного дна была обычной. Зрение продолжало улучшаться в течение следующих 3–4 недель, слониха могла находить небольшие объекты и точно захватывать их хоботом. 
В течение первых 2 недель после операции предполагалось, что пациент испытывает легкий дискомфорт в области глаза из-за несколько учащенного моргания и пенистого экссудата, периодически вытекавшего из конъюнктивального мешка.
Наблюдение за состоянием слонихи осуществлялось на протяжении 5 лет (с момента операции до настоящего времени). На момент написания статьи пациент был зрячим, а состояние глаза не требовало долгосрочного использования каких-либо местных препаратов.
Обсуждение
Факоэмульсификацию выполняли различным диким и экзотическим животным4,5,10,15. Несколько случаев хирургии глаза у слонов12,18 представлено в виде новостных и онлайн-сообщений без подробного описания. Насколько известно авторам, это первый опубликованный клинический случай с описанием УЗИ глаза и факоэмульсификации у данного вида животных.
Причинами образования катаракты являются врожденные дефекты, дисбаланс питания, окислительные повреждения, наследственные дефекты хрусталика, системные заболевания, возрастные изменения, травмы и воздействие окружающей среды11. Есть публикации, посвященные проблеме образования катаракты у диких и экзотических видов животных. В некоторых из них рассматривается целый ряд возможных причин развития этого заболевания, однако подобной информации немного в сравнении с данными о домашних видах1,2,6,24. Отмечались единичные случаи катаракты у африканских и азиатских слонов (как у диких, так и у содержащихся в неволе). Катаракта была выявлена у 16 из 300 слонов, отобранных из популяции в Кении. Сопутствующие патологии глаз включали увеит и вывих хрусталика14. Авторы данной статьи предположили, что избыток инфракрасного и видимого излучения из-за отсутствия тени и отражения тепла от земли может являться фактором, способствующим развитию катаракты. Температурные условия содержания и возможность находиться в укрытии не подтверждают эту теорию в отношении пациента, описанного в данной статье. Учитывая данные о популяции диких слонов в Кении, потенциально исключаются причины, связанные с условиями содержания или недостаточностью питания, которые кажутся более вероятными у содержащихся в неволе животных. Из-за отсутствия данных анамнеза в описанном случае не удалось определить окончательную причину появления катаракты, хотя поражение обоих глаз делает травматическую этиологию менее вероятной, а возраст пациента и клинические признаки заболевания соответствуют картине старческой катаракты.
Обследование содержащихся в неволе азиатских слонов выявило такие нарушения переднего сегмента, как различные стадии катарактогенеза, увеита, а также передний и задний вывих хрусталика. Так как у трети слонов с увеитом присутствовала катаракта, авторы статьи предположили, что появление хрусталик-индуцированного увеита возможно на различных стадиях развития катаракты12, однако дальнейших исследований с целью выявления иных возможных причин увеита не проводилось. Поскольку у пациента в описанном случае не было других признаков системного заболевания, никакого дополнительного обследования в то время не проводили, хотя и были веские подозрения относительно того, что увеит вторичен по отношению к катаракте. 
Как и в случае с любыми крупными мигрирующими видами животных, содержащихся в неволе, лечебный подход рассматривается с точки зрения этики. Для улучшения качества жизни пациента в плане зрения и комфорта, а также для устранения потенциальных проблем, касающихся безопасности, было принято решение о проведении факоэмульсификации. Ранее планировалось удалить правый глаз вместо выполнения операции по удалению катаракты, так как прогноз при проведении факоэмульсификации был признан неблагоприятным по причине наличия увеита, отека роговицы и предполагаемого повреждения сетчатки к моменту постановки диагноза. На тот момент левый глаз у пациента был зрячим и не беспокоил животное, также предполагалось, что другой слон (сосед по вольеру) сможет оказать слонихе достаточную поддержку в сложившейся ситуации, связанной с односторонним зрением.
Для получения акинезии и анальгезии глазного яблока и поддержания центрального положения глаза во время операции был успешно применен четырехточечный ретробульбарный блок, принцип которого описан у лошадей21. Впоследствии нервно-мышечная блокада не потребовалась. Ограничением для проведения ретробульбарной анестезии в данном случае было наличие слепоты у пациента на момент его выхода из анестезии, а также непродолжительного стресса (животное вскоре успокоилось в ответ на голосовые команды). Выбор местных и системных препаратов основывался на опыте самого хирурга и ветеринарного персонала зоопарка. Слониха успешно перенесла энуклеацию 3 года назад, поэтому был выбран аналогичный анестезиологический протокол. Отсутствие попыток воздействия пациента на область операции в послеоперационный период указывало на то, что животное испытывало лишь легкий дискомфорт.
Размер глазного яблока был самой большой проблемой, возникшей во время операции. Даже с помощью длинной иглы для факоэмульсификации достичь заднего полюса хрусталика было невозможно.  Было принято решение использовать технику «разделяй и властвуй», но после удаления первого сегмента хрусталика оставшаяся его часть упала на дно капсулы, что осложнило дальнейшую работу. С этой проблемой справились благодаря использованию 2%-ного раствора гиалуроната натрия для поднятия фрагментов хрусталика к передней части капсулы, как это было описано при факоэмульсификации у лошадей3. Вероятно, именно на данном этапе операции и произошел разрыв задней капсулы. После этого хирург переключился на бимануальную технику с целью обеспечить направление потока ирригационной жидкости в сторону от места разрыва капсулы. Для тампонады стекловидного тела использовался вискоэластик, в результате чего стало возможным проводить факоэмульсификацию в области, расположенной ближе к хирургу25.
Интраокулярные линзы были разработаны для различных видов домашних животных5. Однако в связи с ограничением размера имеющихся линз и стоимостью их изготовления на заказ было принято предварительное решение не устанавливать линзу. Несмотря на это, улучшение зрения после операции было значительным, пациент хорошо ориентировался и точно подбирал различные предметы. Слониха стала меньше вокализировать, и обслуживающий персонал отметил выраженное улучшение качества ее жизни.
Описания подобных клинических случаев вносят неоценимый вклад в ограниченное количество опубликованных материалов по глазным болезням и их лечению у содержащихся в неволе слонов. В этих описаниях подчеркивается необходимость регулярных офтальмологических обследований слонов с целью раннего выявления заболеваний глаз и их успешного лечения.

Благодарность

Авторы благодарят сотрудников специализированного ветеринарного центра Optivet Referrals за возможность использовать их портативный микроскоп и факоэмульсификатор.
Вклад авторов
В написании данной статьи принимали участие: James W. Carter (выполнил операцию и проводил повторные осмотры); Ghislaine Sayers (глава ветеринарной службы зоологического парка); John C. M. Lewis (обеспечивал анестезию); Katherine E. L. Manchip (составила первичное описание данного клинического случая).

Список литературы:
  1. Bakal R. S., Hickson B. H., Gilger B.C., et al. Surgical removal of cataracts due to Diplostomum species in Gulf Sturgeon (Acipenser oxyrinchus desotoi). J Zoo Wildl Med. 36, 504–508, 2005.
  2. Beltran W. A., Vanore M., Ollivet F., Nemoz-Bertholet F., et al. Ocular findings in two colonies of gray mouse lemurs (Microcebus murinus). Vet Ophthalmol. 10, 43–49, 2007.
  3. Brooks D. E., Plummer C. E., Carastro S. M. and Utter M. E. Visual outcomes of phacoemulsification cataract surgery in horses: 1990–2013. Vet Ophthalmol. 17, 117–128, 2014.
  4. Colitz C. M. H., Lewbart G. and Davidson M. G. Phacoemulsification in an adult Savannah monitor lizard. Vet Ophthalmol. 5, 207–209, 2002.
  5. Cooley P. L. Phacoemulsification in a clouded leopard (Neofelis nebulosa). Vet Ophthalmol. 4, 113–117, 2001.
  6. De Villiers C., Seier J. V. and Dhansay M. A. Probable genetic origin for a large number of cataracts among captive-bred vervet monkeys (Chlorocebus aethiops). Am J Primatol. 55, 43–48, 2001.
  7. Duke-Elder S. The eye in evolution. MO: Mosby. pp: 429–501, 1958.
  8. Godagama W. K. and Ratnasooriya W. D. Prevalence of eye defects in domesticated Sri Lankan elephants (Elephas maximus maximus). Ceylon J Sci. 27, 41–5, 1999.
  9. Hayashi S., Osawa T. and Tohyama K. Comparative observations on corneas, with special reference to Bowman’s layer and Descemet’s membrane in mammals and amphibians. J Morphol. 254, 247–258, 2002.
  10. Kelly T. R., Walton W., Nadelstein B. and Lewbart G. A. Phacoemulsification of bilateral cataracts in a loggerhead sea turtle (Caretta caretta). Vet Rec. 156, 774–777, 2005.
  11. Kern T. C. C. Exotic animal ophthalmology. In Veterinary ophthalmology, 5th ed. Eds., Gelatt K. N., Brian G. C. and Kern T. J. Ames, IA: Blackwell Pub, pp: 1750–1819, 2013.
  12. Kraiwong N., Sanyathitiseree P., Boonprasert K., Charoenphan P., Pintawong W. and Thayananuphat A. Anterior ocular abnormalities of captive Asian elephants (Elephas maximus indicus) in Thailand. Vet Ophthalmol. 19, 269–74, 2016.
  13. Lindsay K., Chase M., Landen K. and Nowak K. The shared nature of Africa’s elephants. Biol Conserv. 215, 260–267, 2017.
  14. McCullagh K. G. and Gresham G. A. Eye lesions in the African elephant (Loxodonta africana). Res Vet Sci. 10, 587–589, 1969.
  15. Montiani-Ferreira F., Lima L., Bacellar M., D’Otaviano Vilani R. G., Fedullo J. D. and Lange R. R. Bilateral phacoemulsification in an orangutan (Pongo pygmaeus). Vet Ophthalmol. 13, 91–99, 2010.
  16. Murphy C. J., Kern T. J. and Howland H. C. Refractive state, corneal curvature, accommodative range and ocular anatomy of the Asian elephant (Elephas maximus). Vis Res. 32, 2013–2021, 1992. 
  17. Samuelson D. Ophthalmic Anatomy. In Veterinary ophthalmology, 5th edn. Eds., Gelatt K. N., Brian G. C. and Kern T. J. Ames, IA: Blackwell Pub, pp: 39–170, 2013.
  18. Schmidt M. Elephants (Proboscidea): disease description. In Zoo and wild animal medicine. Ed., Fowler M. E. Philadelphia: W. B Saunders, pp: 915– 927, 1986.
  19. Shoshani J. Taxonomy, classification, history and evolution of elephants. In Biology, medicine and surgery of elephants. Eds., Fowler M. E. and Mikota S. K. Blackwell Pub, pp: 3–14, 2006. 
  20. Stone J. and Halasz P. Topography of the Retina in the Elephant Loxodonta africana. Brain Behav Evol. 34, 84–95, 1989.
  21. Stoppini R. and Gilger B. C. Equine ocular examination basic techniques. In Equine ophthalmology. Ed., Gilger B. C. Ames, IA: Wiley Blackwell, pp: 1–39, 2017.
  22. Suedmeyer W. Special senses. In Biology, medicine and surgery of elephants. Eds., Fowler M. E. and Mikota S. K. Ames, IA: Blackwell Pub, pp: 399–407, 2006.
  23. Super S. Optometric examination of the African elephant Loxodonta africana africana in Southwest Africa. Madoqua. 9, 45–51, 1975. 
  24. Vainisi S. J., Edelhauser H. F., Wolf E. D., Cotlier E. and Reeser F. Nutritional cataracts in timber wolves. J Am Vet Med Assoc. 179, 1175–1180, 1981.
  25. Wilkie D. A. and Willis A. M. Viscoelastic materials in veterinary ophthalmology. Vet Ophthalmol. 2, 147–153, 1999.