Специализированное научно-практическое издания для ветеринарных врачей и студентов ветеринарных ВУЗов.

Автор: Арама Е. В., ветеринарный врач-анестезиолог. Ветеринарная клиника онкологии и интенсивной терапии «ZooMama», г. Кишинев, 2025 г.

Абстракт

Брахицефалический обструктивный синдром (БЦС; англ. Brachycephalic obstructive airway syndrome/BOAS) представляет собой распространенную и клинически значимую патологию среди собак брахицефальных пород, сопровождающуюся анатомическими и функциональными нарушениями в области верхних дыхательных путей. Эта категория пациентов требует хирургической коррекции для улучшения качества жизни и профилактики респираторных осложнений.
Данная статья посвящена анестезиологическому сопровождению собак с БЦС от первичного приема до момента выписки. Рассматриваются ключевые аспекты подготовки, индукции, поддержания анестезии и последующего пробуждения с акцентом на особенности строения дыхательных путей и сопутствующие патологии, характерные для этой группы животных. Представлены современные протоколы премедикации, подходы к обеспечению проходимости дыхательных путей, применение регионарной анестезии, а также методы профилактики послеоперационного респираторного дистресса.
Комплексный индивидуализированный анестезиологический подход позволяет значительно снизить риск интра- и послеоперационных осложнений, повысить безопасность хирургического вмешательства и улучшить прогноз у собак, страдающих БЦС.

Введение

Брахицефалический обструктивный синдром – комплекс клинических проявлений, вызывающих обструкцию верхних дыхательных путей. Данный синдром наиболее часто встречается у представителей пород собак с укороченной мордой, таких как английские и французские бульдоги, мопсы, пекинесы, ши-тцу, бостон-терьеры и др. Ввиду анатомических особенностей у таких животных могут встречаться стеноз ноздрей разной степени выраженности, гиперплазия носовых раковин, гиперплазия мягкого нёба, гипоплазия трахеи, коллапс гортани, бронхов и эверсия гортанных мешочков⁸.

Предоперационный период

На первичном приеме анестезиолога важно собрать полный анамнез пациента. Зачастую брахицефальные породы собак предрасположены не только к заболеваниям верхних дыхательных путей (ВДП), но и к патологиям пищеварительного тракта, таким как хиатальная грыжа, гастрит и гастроэзофагеальный рефлюкс¹.
Имеются данные о развитии гипоксемии и изменении функции левого желудочка без выраженных кардиореспираторных нарушений². В другом исследовании описано, что БЦС оказывает влияние на сердечную функцию, особенно на правые отделы сердца, что связано с повышенным давлением в правом предсердии и развитием диастолической дисфункции³.
Преданестезиологические исследования стабильного пациента корректируются на основе анамнеза, истории болезни, текущего состояния пациента и могут включать общий клинический анализ крови, биохимический анализ крови, анализ газового состава крови, эхокардиографию и электрокардиографию. Согласно опубликованным данным, у 40% собак выявляются признаки изменений в легких еще до проведения хирургического вмешательства⁹, поэтому рентгенографию грудной полости также рекомендуют включить в список предоперационных исследований.
Хирургическое вмешательство у собак предпочтительно проводить в более раннем возрасте как плановую процедуру, чтобы снизить риск послеоперационных осложнений⁹. В случае поступления в клинику нестабильного пациента стабилизация его состояния до проведения хирургического вмешательства является обязательной. При развитии острой дыхательной недостаточности и проявлении таких клинических признаков, как гипертермия, тахипноэ, рвота белой пеной, гиперемия или цианоз слизистых оболочек, пациент должен быть немедленно переведен в отделение интенсивной терапии для обеспечения адекватной оксигенации, охлаждения, седации и тщательного мониторинга до достижения стабильного состояния. Подобные эпизоды, как правило, спровоцированы высокой температурой окружающей среды (непереносимость жары), стрессом, связанным с транспортировкой или пребыванием в клинике, и усугубляются избыточной массой тела. В ряде случаев возможно развитие обструктивного отека легких, обусловленного резким повышением отрицательного внутригрудного давления при попытках вдоха на фоне обструкции ВДП. Такое изменение градиента давления способствует транссудации жидкости из капилляров легочного кровотока в альвеолы, что приводит к нарушению альвеолярно-капиллярного барьера, формированию отека и гипоксемии вследствие нарушения газообмена⁴.
Осмотр должен проводиться с минимальным стрессом для пациента. В качестве монотерапии у собак с выраженными симптомами тревожности, стресса или агрессии может применяться тразодон. Рекомендуется однократная пероральная доза 5–7,5 мг/кг за 90 минут до посещения клиники^5,6.
Для крайне тревожных и агрессивных собак существует протокол релаксации7, согласно которому возможно использовать: габапентин в дозе 20–25 мг/кг перорально вечером накануне планового визита; комбинацию габапентина (20–25 мг/кг) и мелатонина (0,5–1 мг/кг для мелких пород, 1–3 мг/кг для средних пород, 5 мг/кг для крупных пород) перорально за 1–2 часа до посещения клиники; ацепромазин (0,025–0,05 мг/кг) на слизистые оболочки ротовой полости за 30 минут до посещения клиники.
Подбор медикаментозной терапии и дозировок должен основываться на состоянии и реакции конкретного пациента. Следует избегать избыточной седации в преданестезиологический период, так как это может увеличить вероятность обструкции дыхательных путей^5,8. Важно помнить, что наиболее критическими этапами считаются период между премедикацией и интубацией, а также экстубация с последующим восстановлением¹⁵.
При отсутствии предварительного протокола релаксации в домашних условиях особо тревожным либо агрессивным пациентам проводится седация в условиях клиники с применением дексмедетомидина в низких дозах: 2–4 мкг/кг внутримышечно или трансмукозально либо 1–2 мкг/кг внутривенно при наличии венозного доступа13. При избыточной седации в предоперационном периоде целесообразно проведение реверса с использованием атипамезола с целью снижения риска обструкции дыхательных путей, обусловленной расслаблением мягких тканей и угнетением дыхания. Для реверса дексмедетомидина (100 мкг/мл) у собак рекомендуется вводить атипамезол (500 мкг/мл) в дозе, примерно в 5–10 раз превышающей массу введенного дексмедетомидина, что соответствует 0,5–1 мл атипамезола на 1 мл дексмедетомидина²³.
На основании практического опыта и наблюдений коллег¹⁴ было установлено, что планирование хирургических вмешательств целесообразно осуществлять таким образом, чтобы свести к минимуму время пребывания пациента без владельца в клинике. Данный подход, как показывает практика, способствует снижению уровня стресса и тревожности у пациентов.
Наличие в анамнезе признаков нарушений в работе желудочно-кишечного тракта значительно повышает риск возникновения аспирационной пневмонии^5,16-18. В опубликованной литературе описано применение блокаторов H2-гистаминовых рецепторов, ингибиторов протонной помпы, прокинетиков и противорвотных препаратов для профилактики гастроэзофагеального рефлюкса и рвоты^1,5,8,10,16, однако отсутствует единое мнение в отношении рутинного применения этих средств у представителей брахицефальных пород.
В публикации 2021 года¹² описано, что двукратный прием омепразола накануне вечером за 30 минут до вечернего кормления (примерно за 13–14 часов до анестезии) и за 3 часа до анестезии повышает pH гастроэзофагеального рефлюкса (ГЭР) и снижает частоту возникновения сильного кислотного рефлюкса у собак. Однократный же прием омепразола вечером перед анестезией не оказывал значимого влияния на pH рефлюкса.
С учетом данных литературы и практического опыта наиболее рациональной схемой медикаментозной профилактики гастроэзофагеального рефлюкса представляется следующий подход:

омепразол 1 мг/кг перорально вечером за 30 минут до еды накануне анестезии, а также за 3 часа до анестезии;
маропитант 1 мг/кг внутривенно до индукции анестезии, 1 раз в сутки²¹.

Согласно актуальным рекомендациям¹⁰, после регургитации во время наркоза следует аспирировать содержимое пищевода, опционально промыть пищевод физиологическим раствором, а затем обязательно ввести небольшую порцию бикарбоната натрия для нейтрализации pH. Клинические испытания продемонстрировали, что промывание пищевода лишь ускоряет повышение pH, однако для достижения окончательного нейтрального уровня pH требуется введение разбавленного раствора бикарбоната натрия – это позволяет снизить риск развития эзофагита, язв и стриктур пищевода^10,20.
Брахицефальные породы имеют повышенную предрасположенность к язвенным поражениям роговицы¹¹. Развитие изъязвлений у этих животных может быть обусловлено такими анатомо-физиологическими особенностями, как экзофтальм, сниженная слезопродукция и пониженная чувствительность роговицы. В связи с этим рекомендуется размещать пациента таким образом, чтобы избежать контакта роговицы с внешней средой, а также использовать специальные увлажняющие офтальмологические гели до, во время и после анестезии для профилактики образования язв⁵.
Воспалительный процесс в дыхательных путях у собак-брахицефалов с синдромом обструктивного поражения верхних дыхательных путей (БЦС) часто бывает сильным и требует использования глюкокортикостероидов для эффективного снижения воспаления. Чаще всего применяют дексаметазон в дозе 0,1 мг/кг внутривенно5 для снижения отека и воспаления.

Показания к применению стероидов⁵:

До операции: при подтвержденном или предполагаемом воспалении средней или тяжелой степени.
После интубации: в случае трудной или травматичной интубации.
Во время операции: при выявлении умеренного или тяжелого воспаления верхних дыхательных путей (ВДП).
В период восстановления: при возникновении дыхательных затруднений после экстубации.

Назначение нестероидных противовоспалительных препаратов (НПВП) до операции не рекомендуется в случае планируемого применения глюкокортикостероидов. Также их применение в предоперационном периоде не рекомендуется при отсутствии применения стероидов⁵.
У собак брахицефальных пород наблюдается повышенный тонус блуждающего нерва, что при наличии БЦС может вызвать выраженную вагусную реакцию. Это проявляется стремительным развитием брадикардии при манипуляциях с ВДП (например, во время операции, интубации или экстубации)⁵.
Рекомендована преоксигенация 100%-ным кислородом в течение 3–5 минут до анестезии, что увеличивает время до десатурации (SpO2 < 90%) примерно с 1 минуты до 5 минут⁵.

Индукция анестезии

В настоящее время отсутствует единое мнение или стандартизированный протокол относительно предпочтительной схемы индукции анестезии у собак с БЦС. Ключевой задачей при индукции является сокращение времени до интубации, что позволяет снизить риск возникновения дыхательных осложнений. Масочная индукция с применением ингаляционного анестетика не рекомендуется^5,8.
Согласно ретроспективному когортному исследованию²², использование кетамина в комбинации с бензодиазепином в качестве препаратов для индукции анестезии у собак сопровождалось более высоким риском постанестезиологических осложнений по сравнению с пропофолом (как с лидокаином, так и без него). Однако в более позднем обзоре⁵ такая комбинация рассматривается как безопасный и эффективный вариант для большинства клинических случаев, поскольку не вызывает выраженной дыхательной депрессии и традиционно считается подходящей для животных с нарушениями дыхательных путей.
Таким образом, выбор схемы индукции остается прерогативой анестезиолога и должен основываться на индивидуальной оценке пациента, его анатомо-физиологических особенностях и предполагаемом объеме вмешательства.

Описанные варианты индукции анестезии:

Пропофол или алфаксалон (2–4 мг/кг внутривенно любого из препаратов) быстро действуют и легко титруются, что делает их подходящим выбором для индукции анестезии. Предварительное введение мидазолама или диазепама снижает необходимую дозу пропофола для оптимальной степени седации, необходимой для интубации. В рамках исследования, посвященного оценке влияния изменения последовательности введения мидазолама (0,25 мг/кг) и пропофола (1 мг/кг) на качество индукции и потребность в пропофоле¹⁹, было выявлено, что последовательность, включающая болюсное введение пропофола до мидазолама с последующим титрованием пропофола, обеспечивала меньшую суммарную дозу пропофола по сравнению со схемой, в которой мидазолам вводился первым. Кроме того, этот метод снижал ажитацию от мидазолама. Оба препарата угнетают дыхание, поэтому важны минимальные дозы и преоксигенация.
Кетамин в сочетании с бензодиазепинами (2–5 мг/кг внутривенно кетамин, 0,2–0,5 мг/кг внутривенно мидазолам или диазепам) вызывает минимальное угнетение дыхания или вовсе его не вызывает, но начало действия более медленное, чем у пропофола или алфаксалона. Глотательный рефлекс сохраняется дольше, чем при использовании пропофола или алфаксалона, однако при достижении адекватной глубины анестезии с помощью ингаляционных анестетиков этот рефлекс подавляется. Возможно применение данной комбинации в низких дозах с добавлением пропофола (до 2 мг/кг внутривенно). При выборе данного варианта следует учитывать дозозависимый эффект кетамина – возможное повышение артериального давления и учащение сердечных сокращений.
Этомидат (1–3 мг/кг внутривенно) часто рекомендуется как основной выбор при сопутствующих сердечных заболеваниях⁵. Умеренно угнетает дыхание, поэтому важны низкие дозы и преоксигенация.
Тилетамин/золазепам (1–4 мг/кг) имеет длительное действие, что может увеличить время восстановления. Если процедура очень короткая (например, ларингоскопия), рекомендуется препарат с более коротким временем действия⁵.

Следует учитывать, что премедикация снижает потребность в пропофоле на 40–60%²³, а также снижает минимальную альвеолярную концентрацию (MAC) ингаляционных анестетиков на 20–40% в зависимости от используемой дозы и комбинации препаратов^29-31.

Особенности интубации

Необходимо заранее подготовиться к сложной интубации. Для ее максимально быстрого и безопасного проведения рекомендуется учитывать ряд факторов и соблюдать следующие правила:

Интубацию следует проводить в положении пациента лежа на груди.
Размер эндотрахеальной трубки следует подбирать с осторожностью, поскольку у пациента может наблюдаться коллапс гортани, а также гипоплазия трахеи. В таких случаях может потребоваться трубка меньшего диаметра по сравнению с обычными рекомендациями для собак аналогичной массы нормоцефальных пород. Рекомендуется заранее подготовить трубки нескольких размеров для быстрого доступа в процессе интубации.
Наличие слизи и пены может осложнять интубацию.
Интубацию не следует проводить при сохраненных глотательных рефлексах, так как это может привести к травме и усугублению воспаления или отека ВДП.
После интубации следует немедленно инсуфлировать манжету эндотрахеальной трубки, зафиксировать интубационную трубку и подключить дыхательный контур к ней с подачей кислорода.

Поддержание анестезии

Предоперационное согласование плана операции с хирургом способствует более точному выбору анестезиологической тактики и уменьшению риска осложнений. Продолжительность хирургического вмешательства во многом определяется опытом оперирующего хирурга, что также необходимо учитывать при планировании анестезии.
Рекомендуется минимизировать время проведения хирургического вмешательства, поскольку увеличение продолжительности анестезии сопряжено с ростом вероятности осложнений. В рамках ретроспективного когортного исследования²² было установлено, что каждые 30 минут анестезии увеличивают риск осложнений на 18%. В другом исследовании²⁴ было выявлено, что каждые дополнительные 15 минут анестезии повышают риск постанестезиологических осложнений на 12%, а интраоперационных – на 11%.
Основные риски и возможные осложнения включают чрезмерную глубину анестезии, угнетение сердечно-сосудистой системы, непродуктивное спонтанное дыхание, особенно у пациентов с избыточной массой тела.
Как и в случае с индукцией, протоколы поддержания анестезии для собак с БЦС не имеют установленного стандарта.
Комбинированная анестезия с использованием ингаляционных и неингаляционных препаратов является наиболее распространенным подходом в клинической практике.
Ингаляционная анестезия осуществляется с использованием изофлурана либо севофлурана. Рекомендуемая концентрация анестетика в дыхательной смеси составляет 1–3 об.%. Доза ингаляционного анестетика должна быть минимальной для снижения негативного воздействия на артериальное давление и вентиляцию.
Тотальная внутривенная анестезия может проводиться с использованием пропофола в дозе 0,1–0,6 мг/кг/мин²⁷.
При длительных вмешательствах системную внутривенную анальгезию возможно обеспечивать с помощью введения инфузий с постоянной скоростью комбинации следующих препаратов^23,27:

фентанил: 2–10 мкг/кг/ч для поддержания анальгезии у собак, включая пациентов с респираторными заболеваниями²⁷;
кетамин: часто используется в субклинических дозах (2–10 мкг/кг/мин) для поддержания анальгезии и седативного эффекта²⁷;
лидокаин: применяется в болюсах 1–2 мг/кг с последующей инфузией 30–80 мкг/кг/мин²⁷;
дексмедетомидин: внутривенные инфузии 0,2–5 мкг/кг/ч в зависимости от степени тяжести состояния и необходимого седативного эффекта²⁷.

Регионарная анестезия представляет собой эффективную альтернативу системной анальгезии, обеспечивая более качественное обезболивание при меньшем риске осложнений. Этот метод анестезии позволяет снизить дозы либо исключить из протокола опиоиды и другие системные анальгетики. При проведении ринопластики и палатопластики настоятельно рекомендуется блокада верхнечелюстного нерва билатерально как метод эффективной анальгезии⁵. При кратковременной хирургической манипуляции, такой как ринопластика, для обеспечения анальгезии может быть достаточно проведения блокады подглазничного нерва билатерально.
Блокада подглазничного нерва. Препарат вводится через инфраорбитальное отверстие, расположенное дорсальнее третьего премоляра (фото 1, 2). Иглу при этом располагают вдоль верхней челюсти, удерживая ее параллельно нёбу и как можно ближе к кости. Глубина введения не должна превышать уровень медиального угла глаза. Следует помнить, что у брахицефальных пород необходимо соблюдать особую осторожность, поскольку инфраорбитальный канал у них короткий и чрезмерное продвижение иглы может привести к травме глазного яблока.
Для повышения безопасности процедуры рекомендуется использовать внутривенный катетер: после входа в канал игла извлекается, а мягкий катетер остается на месте и служит для введения анестетика, что значительно снижает риск повреждения глаза^32,33. По наблюдениям практикующих ветеринарных анестезиологов, возможно также выполнение данной блокады без непосредственного углубления иглы в канал, с последующей инфильтрацией анестетика не в инфраорбитальное отверстие, а рядом с ним. Перед введением анестетика обязательно проведение аспирационной пробы.

Фото 1. Определение места пункции для проведения инфраорбитальной блокады.

Фото 2. Инфраорбитальная блокада.

Блокада верхнечелюстного нерва. Для проведения блокады ориентируются на скуловую дугу и латеральный угол глаза. Иглу вводят под скуловой дугой, на уровне латерального угла глаза, направляя ее в сторону четвертого премоляра противоположной стороны верхнего зубного ряда. Кончик иглы должен достичь области верхнечелюстного отверстия в крылонёбной ямке. При контакте с костью иглу немного оттягивают назад, затем, убедившись в отсутствии крови в игле при аспирации, медленно вводят рассчитанный объем анестетика. Блокада может выполняться как чрескожно, так и интраорально (фото 3), предпочтительно через поднятую верхнюю губу^33,34.

Фото 3. Блокада верхнечелюстного нерва. Интраоральный доступ.

Для данных блокад объем анестетика составляет 0,25–0,5 мл. Описано использование лидокаина (2%), бупивакаина (0,25–0,5%), ропивакаина (0,5%), левобупивакаина (0,5%)^34,36.
Аппликационная анестезия с использованием лидокаина в форме геля или спрея перед проведением интубации или хирургической манипуляции на ВДП снижает чувствительность слизистой оболочки и минимизирует или устраняет рефлексы, связанные с активацией механорецепторов, такие как кашлевой, рвотный рефлексы и ларингоспазм.

Продолжение в следующем номере

Список литературы:

Freiche V, German AJ. Digestive Diseases in Brachycephalic Dogs. Vet Clin North Am Small Anim Pract. 2021 Jan;51(1):61-78. doi: 10.1016/j.cvsm.2020.09.006. PMID: 33187623.
Raphaela A. M. Canola, Marlos Gonçalves Sousa, Jaislane Bastos Braz, et al. Cardiorespiratory evaluation of brachycephalic syndrome in dogs. Pesquisa Veterinária Brasileira. 2018. 38. 1130-1136. doi: 10.1590/1678-5150-pvb-5376.
Brložnik M, Nemec Svete A, Erjavec V, Domanjko Petrič A. Echocardiographic analysis of dogs before and after surgical treatment of brachycephalic obstructive airway syndrome. Front Vet Sci. 2023 May 4;10:1148288. doi: 10.3389/fvets.2023.1148288.
Sophie Adamantos, Dez Hughes. Pulmonary edema, Editor(s): Deborah C. Silverstein, Kate Hopper, Small Animal Critical Care Medicine (3rd Edition), 2023, Pages 133-134.
Grubb T. Anesthesia and analgesia in brachycephalic dogs. Today’s Veterinary Practice. 2022;12(5):E1–E7.
Gilbert-Gregory SE, Stull JW, Rice MR, Herron ME. Effects of trazodone on behavioral signs of stress in hospitalized dogs. Javma-Journal of the American Veterinary Medical Association. 2016;249:1281- 1291.
Costa RS, Jones T, Robbins S, Stein A, Borns-Weil S. Gabapentin, melatonin, and acepromazine combination prior to hospital visits decreased stress scores in aggressive and anxious dogs in a prospective clinical trial. J Am Vet Med Assoc. 2023 Jul. 26;261(11):1660-1665. doi: 10.2460/javma.23.02.0067. PMID: 37495226.
Pascoe, Peter, Pypendop, Bruno. Comparative Anesthesia and Analgesia – Dogs and Cats. 2024. doi: 10.1002/9781119830306.ch50.
Lindsay B, Cook D, Wetzel JM, et al. Brachycephalic airway syndrome: management of post-operative respiratory complications in 248 dogs. Aust Vet J. 2020;98(5):173-180.
Grubb T, Sager J, Gaynor JS, Montgomery E, Parker JA, Shafford H, Tearney C. 2020 AAHA Anesthesia and Monitoring Guidelines for Dogs and Cats. J Am Anim Hosp Assoc. 2020 Mar/Apr;56(2):59-82.
Downing F, Gibson S. Anaesthesia of brachycephalic dogs. J Small Anim Pract. 2018. Dec;59(12):725-733. doi: 10.1111/jsap.12948.
Lotti F, Twedt D, Warrit K, Bryan S, et al. Effect of two different pre-anaesthetic omeprazole protocols on gastroesophageal reflux incidence and pH in dogs. J Small Anim Pract. 2021 Aug;62(8):677-682. doi: 10.1111/jsap.13328.
Wilson DV, Evans AT. The effect of topical treatment on esophageal pH during acid reflux in dogs. Vet Anaesth Analg. 2007 Sep;34(5):339-43. doi: 10.1111/j.1467-2995.2006.00340.x.
Lukanc, Barbara, Nemec Svete, Alenka, Erjavec, Vladimira. Anaesthetic Management for Dogs Treated Surgically for Brachycephalic Syndrome: A Preliminary Study. 2022. 15-21. doi: 10.55295/PSL.2021.D.003.
Dugdale AHA, Beaumont G, Bradbrook C, Gurney M. Chapter. In: Veterinary Anaesthesia: Principles to Practice. 2nd ed. 2020. p. 607–608.
Poncet CM, Dupre GP, Freiche VG, Bouvy BM. Long-term results of upper respiratory syndrome surgery and gastrointestinal tract medical treatment in 51 brachycephalic dogs. J Small Anim Pract. 2006;47(3):137-142.
Poncet CM, Dupre GP, Freiche VG, et al. Prevalence of gastrointestinal tract lesions in 73 brachycephalic dogs with upper respiratory syndrome. J Small Anim Pract. 2005;46(6):273-279.
Darcy HP, Humm K, Harr GT. Retrospective analysis of incidence, clinical features, potential risk factors, and prognostic indicators for aspiration pneumonia in three brachycephalic dog breeds. JAVMA. 2018;253(7):869-876.
Sanchez A, Belda E, Escobar M, et al. Effects of altering the sequence of midazolam and propofol during co-induction of anaesthesia. Vet Anaesth Analg. 2013;40(4):359-366.
Wilson DV, Evans AT. The effect of topical treatment on esophageal pH during acid reflux in dogs. Vet Anaesth Analg. 2007 Sep;34(5):339-43. doi: 10.1111/j.1467-2995.2006.00340.x.
Ramsey D, Fleck T, Berg T, et al. Cerenia prevents perioperative nausea and vomiting and improves recovery in dogs undergoing routine surgery. Intern J Appl Res Vet Med 2014;12:228–37.
Gruenheid M, Aarnes TK, McLoughlin MA, Simpson EM, Mathys DA, et al. Risk of anesthesia-related complications in brachycephalic dogs. J Am Vet Med Assoc. 2018 Aug 1;253(3):301-306. doi: 10.2460/javma.253.3.301.
Plumb DC. Plumb’s Veterinary Drug Handbook. 10th ed. 2024. p. 1080–1086.
Doyle CR, Aarnes TK, Ballash GA, Wendt-Hornickle EL, et al. Anesthetic risk during subsequent anesthetic events in brachycephalic dogs that have undergone corrective airway surgery: 45 cases (2007-2019). J Am Vet Med Assoc. 2020 Oct 1;257(7):744-749. doi: 10.2460/javma.257.7.744.
Hill M, Lepiz ML, Ida KK, Rutter C, et al. Implementation of a standard perioperative protocol reduces postoperative respiratory distress events in dogs undergoing surgical correction of brachycephalic obstructive airway syndrome. J Am Vet Med Assoc. 2025 Jan 29;263(5):590-598. doi: 10.2460/javma.24.09.0598.
Franklin PH, Liu NC, Ladlow JF. Nebulization of epinephrine to reduce the severity of brachycephalic obstructive airway syndrome in dogs. Vet Surg. 2021 Jan;50(1):62-70. doi: 10.1111/vsu.13523.
Brunson DB, Johnson RA. Respiratory disease. In: Grubb T, Lobprise H, editors. Canine and Feline Anesthesia and Co‐Existing Disease. 2nd ed. Hoboken (NJ): Wiley-Blackwell; 2021. p. 55–70.
O’Neill, D.G., Jackson, C., Guy, J.H. et al. Epidemiological associations between brachycephaly and upper respiratory tract disorders in dogs attending veterinary practices in England. Canine Genet Epidemiol 2, 10 (2015). https://doi.org/10.1186/s40575-015-0023-8
Borges, P. H., Monteiro, B. P., da Silva, D. A. Effects of benzodiazepines on isoflurane minimal alveolar concentration in dogs. Journal of Veterinary Pharmacology and Therapeutics, 2015. 38(6), 589–594. https://doi.org/10.1111/jvp.12231
Gaynor, J. S., Muir, W. W., Johnson, C. B. Anesthetic and analgesic effects of tiletamine-zolazepam combinations in dogs. Veterinary Clinics of North America: Small Animal Practice, 1999, 29(1), 15–24. https://doi.org/10.1016/S0195-5616(99)80004-9
Hall, L. W., Clarke, K. W.,Trim, C. M. Veterinary Anesthesia and Analgesia (5th ed.). Elsevier. 2016.
Pumphrey SA, Reader RC, Rosenstein DS, et al. Iatrogenic ocular trauma associated with infraorbital block performed for rhinoscopy in a cat: case report and preliminary imaging findings. JFMS Open Rep. 2021 Apr 28;7(1):20551169211011456. PMID: 33996139.
Grubb T, Lobprise H. Local and regional anaesthesia in dogs and cats: Descriptions of specific local and regional techniques (Part 2). Vet Med Sci. 2020 May;6(2):218-234. PMID: 31965749.
Otero, Pablo, Portela, Diego. Manual of small animal regional anesthesia: Illustrated anatomy for nerve stimulation and ultrasound-guided nerve blocks. 2018
Hoareau GL, Mellema MS, Silverstein DC. Indication, management, and outcome of brachycephalic dogs requiring mechanical ventilation. J Vet Emerg Crit Care (San Antonio). 2011 Jun;21(3):226-35. doi: 10.1111/j.1476-4431.2011.00635.x.
Read M, Campoy L, Fischer B, editors. Small Animal Regional Anesthesia and Analgesia. Hoboken (NJ): Wiley-Blackwell; 2024. doi: 10.1002/9781119514183
Fitzmaurice M, Adami C, Ladlow J, Tomlinson F, Gittel C. Static respiratory compliance in anaesthetised and intubated brachycephalic dogs with and without brachycephalic obstructive airway syndrome. Vet J. 2025 Aug;312:106372. doi: 10.1016/j.tvjl.2025.106372.
Staffieri F, Franchini D, Carella GL, Montanaro MG, et al. Computed tomographic analysis of the effects of two inspired oxygen concentrations on pulmonary aeration in anesthetized and mechanically ventilated dogs. Am J Vet Res. 2007 Sep;68(9):925-31. doi: 10.2460/ajvr.68.9.925.
Nejamkin P, Araos J, Genaro A, Martin-Flores M. Pilot evaluation of a three dimensional-printed oropharyngeal airway device for brachycephalic dogs. Vet Anaesth Analg. 2021 May;48(3):478-479. doi: 10.1016/j.vaa.2021.03.001. Epub 2021 Mar 19. PMID: 33840615.
https://www.aircanvet.com/ - сайт производителя орофарингеалтной канюли Aircan

Анестезиологическое сопровождение пациента при хирургической коррекции синдрома обструкции дыхательных путей у собак-брахицефалов. Часть 1