Перевод: Грачева Д. В., ветеринарный врач интернальной медицины, СВК «Белый клык».
Редактор перевода: Смирнова О. О., к.б.н., ветеринарный врач-терапевт, эндокринолог.
Продолжение. Начало в №2/2025
Гиперадренокортицизм у собак (синдром Кушинга)
Обзор
Синдром Кушинга (СК/ГАК) представляет собой комплекс клинических проявлений, связанных с чрезмерным воздействием глюкокортикоидов. Основными симптомами являются полиурия, полидипсия, полифагия и одышка. Это может быть вызвано эндогенной избыточной секрецией кортизола или экзогенным введением глюкокортикоидов (ятрогенная этиология). Спонтанный СК может быть зависимым от адренокортикотропного гормона (АКТГ) (85%) или независимым от АКТГ (15%). Подавляющее большинство случаев АКТГ-зависимого СК вызвано опухолью гипофиза (гипофизарный гиперадренокортицизм; ГГАК), а большинство случаев АКТГ-независимого СК вызвано опухолями надпочечников (надпочечниковый гиперадренокортицизм; НГАК). Другие причины, включая эктопическую секрецию АКТГ и гиперадренокортицизм, связанный с приемом пищи, здесь рассматриваться не будут.Диагностическое тестирование и мониторинг
Все диагностические тесты для выявления синдрома Кушинга имеют ограничения и могут давать ложноположительные результаты при проведении у пациентов с сопутствующими заболеваниями других органов или в состоянии стресса28. Поэтому правильный отбор пациентов перед тестированием очень важен и, вероятно, влияет на точность диагностики в большей степени, чем выбор конкретного теста. Практикующие врачи должны проводить обследование пациентов только при серьезном клиническом подозрении на СК (т. е. при наличии двух или более клинических или биохимических отклонений, указывающих на СК). Кроме того, следует предпринять попытки стабилизировать или устранить любые известные сопутствующие заболевания (такие как сахарный диабет), прежде чем проводить тестирование на наличие СК29.Малая дексаметазоновая проба (МДП) является предпочтительным диагностическим тестом. Ложноположительные результаты могут возникать при стрессе или заболеваниях, не связанных с эндокринной системой, таких как неконтролируемый сахарный диабет30,31. Результаты МДП также могут помочь отличить ГГАК от НГАК.
Техника выполнения малой дексаметазоновой пробы
- Возьмите образец сыворотки крови для определения исходного уровня кортизола.
- Внутривенно введите 0,01 мг/кг дексаметазона (если используется дексаметазона натрия фосфат, рассчитайте дозу, применяя концентрацию 3 мг/мл, а не 4 мг/мл, как указано на флаконе).
- Соберите образцы сыворотки для измерения уровня кортизола через 4 и 8 часов.
- Обратитесь к лабораторным диагностическим показателям. Приведенные ниже значения используются только в качестве примеров.
- Оцените результат через 8 часов. Уровень кортизола > 1,4 мкг/дл соответствует диагнозу СК; продолжайте дифференциацию.
- Если концентрация кортизола через 8 часов составляет от 1,0 до 1,39 мкг/дл, но клинические подозрения на наличие СК высоки, рассмотрите возможность проведения теста с АКТГ или повторение МДП через 2–3 месяца.
- Если результат через 8 часов соответствовал диагнозу СК, то оцените наличие признаков подавления синтеза кортизола, если присутствуют какие-то из следующих признаков, то диагноз соответствует ГГАК:
- Концентрация кортизола через 4 часа составляет < 1,4 мкг/дл.
- Концентрации кортизола через 4 или 8 часов составляют менее 50% от исходной концентрации.
- До 35% собак с ГГАК не соответствуют, по крайней мере, одному из этих критериев, следовательно, отсутствие подавления не подтверждает наличия НГАК. В случае необходимости дальнейшей дифференциации, можно провести УЗИ брюшной полости и/или определить концентрацию эндогенного АКТГ.
- Рекомендации:
- Образцы должны быть взяты в соответствии с рекомендациями лаборатории. Как правило, голодания не требуется, но чрезмерная липемия может повлиять на результаты. При наличии липемии обратитесь за консультацией в лабораторию для интерпретации результатов.
- При использовании глюкокортикоидов короткого действия их необходимо отменить за 2 недели до проведения тестирования, в то время как после приема глюкокортикоидов длительного действия (таких как триамцинолон) может потребоваться до 4 недель33-35.
Стресс и заболевания, не связанные с эндокринной системой (в частности диабет), по-видимому, в меньшей степени влияют на результат теста с АКТГ, чем на результат МДП29,30. Тест с АКТГ используется, если МДП не подтверждает диагноз «гиперадренокортицизм», но остаются серьезные клинические подозрения, а также для подтверждения ятрогенного СК и контроля терапии СК.
Результаты теста с АКТГ интерпретируются следующим образом:
- Обратитесь к лабораторным диагностическим показателям. Значения, указанные здесь, используются только в качестве примеров.
- Если уровень кортизола в крови через 1 час после введения АКТГ превышает 22 мкг/дл, это соответствует СК.
- Если уровень кортизола как до, так и после стимуляции не превышает референтных значений лаборатории, что имитирует гипоадренокортицизм, это согласуется с ятрогенным СК и требует дополнительного исследования для определения вероятности воздействия глюкокортикоидов. Такая картина также может наблюдаться у собак с НГАК, при исключении ятрогенного гиперадренокортицизма следует провести МДП.
- У собак, испытывающих хронический или умеренный стресс, и у собак с неадренальными заболеваниями могут наблюдаться ложноположительные результаты, но они встречаются реже, чем при проведении МДП30.
- У собак с опухолями надпочечников этот тест недостаточно чувствителен, что приводит к ложноотрицательным результатам у 41% собак с ГГАК36. Если концентрация кортизола после стимуляции ниже диагностической границы, но остается серьезное клиническое подозрение на СК, следует провести МДП.
Терапия
Адреналэктомия является предпочтительным методом лечения НГАК, однако клиенты могут отказаться от этой операции из-за стоимости, возможных осложнений и наличия сопутствующих заболеваний. Митотан – это адренокортиколитический препарат, который ранее был основным средством лечения ГГАК и до сих пор используется некоторыми клиницистами. Трилостан одобрен FDA для лечения ГГАК и НГАК. Несмотря на то что препарат следует принимать 1 раз в день, в нескольких рецензируемых источниках указано, что двукратный прием может быть предпочтительнее39-41. Утвержденная FDA доза составляет 2,2–6,7 мг/кг/сутки, но могут использоваться и более низкие дозы – 2–3 мг/кг/сутки. Несколько членов рабочей группы по разработке данных рекомендаций используют начальную дозу ~ 1 мг/кг 2 раза в день, в зависимости от размеров капсул, одобренных FDA и имеющихся в продаже.Мониторинг требует пристального внимания к клиническим признакам и определению уровня кортизола.
Существует множество опубликованных протоколов мониторинга и тестирования, и единого мнения по какому-либо одному протоколу нет42. Исторически тест с АКТГ использовался для мониторинга терапии митотаном и трилостаном, однако более поздние исследования показали, что уровень кортизола после стимуляции АКТГ слабо коррелирует с клиническими проявлениями у собак, получавших трилостан43,44. Поскольку тест с АКТГ является единственным окончательным тестом для диагностики гипоадренокортицизма, основная цель его использования при мониторинге лечения спонтанного СК состоит в исключении избыточного подавления выработки кортизола. Ввиду того что СК – заболевание с высокой вариабельностью, при выборе конкретного протокола мониторинга важное значение имеют профессиональное суждение и осмотрительность клинициста.
Первоначальный ответ оценивается спустя 2 недели, затем спустя 1 месяц, а затем каждые 3–6 месяцев. Клинические признаки являются основным показателем контроля за состоянием пациента и необходимости корректировки дозы.
Рекомендуется измерять концентрацию кортизола перед приемом препарата, чтобы определить, безопасно ли использовать текущую дозу или следует ее скорректировать. Тест с АКТГ следует проводить спустя 3–5 часов после введения трилостана, при этом для контроля допустима меньшая доза синтетического АКТГ (1 мкг/кг внутривенно)45. Основная цель первой повторной проверки спустя 2 недели после начала приема трилостана – убедиться в том, что уровень кортизола не становится слишком низким. После первого месяца лечения дозу необходимо увеличить, как правило, на 25–50% в зависимости от размеров капсул, имеющихся в продаже. Владельцам не следует давать питомцу трилостан, если собака плохо себя чувствует. Рабочая группа по составлению рекомендаций признает, что иногда пациентам назначают неодинаковые дозы 2 раза в день. После приема повышенной дозы всегда следует проводить мониторинг уровня кортизола. Например, если пациент получает 40 мг и 30 мг препарата, после приема дозы 40 мг следует провести тест с АКТГ.
Важно! Измерение уровня кортизола помогает определить, подходит ли пациенту текущая доза или требуется ее корректировка.
Подход к диагностике, основанный на клинической картине
СК было принято диагностировать на основании наличия классических клинических признаков (полиурия, полидипсия, полифагия, одышка и дерматологические отклонения), клинико-патологических отклонений (повышение уровня ЩФ и холестерина, стрессовая лейкограмма, тромбоцитоз, удельный вес мочи < 1,020 и протеинурия) и результатов МДП или теста с АКТГ. Однако с ростом осведомленности о СК клинические подозрения начали распространяться на пациентов с менее очевидными проявлениями, у которых могли отсутствовать некоторые из перечисленных признаков или клинико-патологических отклонений.Цель информации, приведенной в этом разделе руководства, состоит в том, чтобы помочь практикующему врачу ориентироваться в диагностическом процессе у пациентов с различными клиническими симптомами.
ГРУППА 1: клинические и клинико-патологические данные, соответствующие синдрому Кушинга
Клиническая картина. Это собаки с классическими признаками и клинико-патологическими отклонениями, ожидаемыми при СК (табл. 2, 3).
Следующие шаги:
- Минимальная база данных должна включать исследование крови (ОАК, биохимический анализ сыворотки крови), анализ мочи. Рассмотрите возможность оценки артериального давления, проведения бактериологического посева мочи и определения соотношения концентраций белка и креатинина в моче.
- Необходимо провести специфическое тестирование эндокринных патологий. В качестве первого шага руководство рекомендует провести МДП. Если МДП подтверждает наличие СК, рассмотрите возможность дифференциации ГГАК и НГАК (если эта информация не получена с помощью МДП) и соответствующей терапии.
- Дифференциация ГГАК и НГАК помогает определить варианты лечения и предоставляет владельцу прогностическую информацию. Однако, если владелец не намерен проводить адреналэктомию при выявлении опухоли надпочечника, пациентов можно лечить трилостаном без уточнения диагноза.
- Диагностика, которая помогает дифференцировать ГГАК и НГАК, включает в себя МДП, УЗИ брюшной полости и определение концентрации эндогенного АКТГ.
- Компьютерная томография (КТ) головы проводится в том случае, если у собак с ГГАК имеются клинические признаки, соответствующие макроаденоме гипофиза. КТ также можно рекомендовать, если владелец планирует проведение лучевой терапии или гипофизэктомии.
- Пациентам с НГАК КТ брюшной полости обычно проводится перед адреналэктомией. При получении отрицательного результата МДП проведите тест с АКТГ. Если результат теста с АКТГ положительный, рассмотрите возможность дифференциации ГГАК и НГАК и проведения терапии. Если результат теста с АКТГ отрицательный, целесообразно направить пациента к узкопрофильному специалисту. Обратите внимание на то, что эндокринную диагностику не следует проводить в течение 2 недель после приема глюкокортикоидов короткого действия (пероральных, местных ушных или офтальмологических) или в течение 4 недель после приема глюкокортикоидов длительного действия33-35.
Клиническая картина. Собаки из группы 2 – это животные, у которых, по словам владельцев, нет клинических признаков, соответствующих СК, однако есть одно или несколько клинико-патологических отклонений (табл. 2).
Следующие шаги:
- Первым шагом в ведении таких пациентов является тщательное изучение анамнеза пациента с акцентом на потребление воды, привычное мочеиспускание, усиление недержания мочи или никтурию. Рассмотрите отмену глюкокортикоидов (если животное их получает), включая местные формы препаратов.
- Повторите тестирование, чтобы подтвердить предыдущие отклонения.
- Если клинических признаков СК выявлено не было, рассмотрите альтернативные варианты клинико-патологических отклонений и проведите соответствующую диагностику. Например, при повышенной концентрации ЩФ может быть выполнена визуальная диагностика брюшной полости. Специальное эндокринное обследование не потребуется до тех пор, пока не появятся клинические признаки СК.
- Тест СКК может быть рассмотрен, если ветеринарный специалист или владелец животного очень заинтересован в том, чтобы исключить диагноз СК. Обратите внимание, что тест СКК обладает высокой чувствительностью, однако является неспецифичным. Хотя отрицательный результат делает СК маловероятным, положительный результат не подтверждает наличия СК.
Клиническая картина. Клинические признаки у собак из группы 3 могут включать полиурию, полидипсию, полифагию, тахипноэ и дерматопатию (табл. 3).
Следующие шаги:
- Тщательно расспросите владельца, чтобы исключить прием глюкокортикоидов, которые могут вызвать СК.
- Если подозрение на СК невелико, следите за прогрессированием заболевания или изменением клинических признаков. Для исключения СК можно использовать тест СКК.
- При наличии серьезных клинических подозрений рекомендуется провести специальное эндокринное обследование. Пациентам без существенных сопутствующих заболеваний (таких как сахарный диабет) рекомендуется проведение МДП.
- Если СК подтвержден, рассмотрите возможность проведения дифференциации ГГАК и НГАК (см. ГРУППУ 1). Если СК не подтвержден, рассмотрите другие дифференциальные диагнозы, соответствующие выявленным клиническим признакам. Если у вас все еще есть серьезные подозрения на СК, можно выполнить пробу АКТГ и/или провести консультацию с профильным специалистом.
Клиническая картина. Собаки из группы 4 – это пациенты, у которых может быть СК, но для постановки диагноза необходимо тщательно дифференцировать симптомы СК и других патологических состояний. Обратите внимание, что гиперадренокортицизм сам по себе не вызывает анорексию, рвоту или диарею. К этой категории пациентов могут относиться:
- Собаки, у которых проявляющиеся симптомы вызваны патологическим процессом, не связанным с СК (например, острым гастроэнтеритом).
- Собаки с признаками сопутствующей патологии, связанной с СК (например, тромбоэмболия легочной артерии, мукоцеле желчного пузыря или диабетический кетоацидоз).
- Собаки с признаками увеличивающейся макроаденомы гипофиза (снижение аппетита, изменение поведения или другие неврологические симптомы). В этом случае макроаденома, а не гиперадренокортицизм, вызывает такие симптомы.
- Устраните имеющиеся клинические признаки и основную причину острого заболевания.
- Не проводите специальные эндокринные тесты на СК до тех пор, пока острое заболевание не будет купировано. Острое заболевание вызывает стресс, который может привести к ложноположительным результатам, особенно при проведении МДП. Кроме того, диагностика и лечение СК не приведут к немедленному улучшению клинических проявлений.
- Не следует откладывать лечение сахарного диабета у собак с подозрением на СК.
- Рабочая группа рекомендует (по возможности) подождать по крайней мере 2–4 недели после улучшения состояния пациента, чтобы провести тестирование на наличие СК.
- Если острое или хроническое заболевание вряд ли разрешится или улучшится без устранения возможной причины, лежащей в его основе, подумайте о консультации с профильным специалистом, чтобы обсудить необходимость и сроки проведения специального эндокринного обследования.
Список литературы:
- Behrend E, Holford A, Lathan P, et al. 2018 AAHA Diabetes Management Guidelines for Dogs and Cats. J Am Anim Hosp Assoc 2018;54(1): 1–21.
- Carney HC, Ward CR, Bailey SJ, et al. 2016 AAFP Guidelines for the Management of Feline Hyperthyroidism. J Feline Med Surg 2016;18(5): 400–16.
- Gosselin SJ, Capen CC, Martin SL. Histologic and ultrastructural evaluation of thyroid lesions associated with hypothyroidism in dogs. Vet Pathol 1981;18:299–309.
- Kennedy LJ, Quarmby S, Happ GM, et al. Association of canine hypothyroidism with a common major histocompatibility complex DLA class II allele. Tissue Antigens 2006;68:82–6.
- Nachreiner RF, Refsal KR, Graham PA, et al. Prevalence of serum thyroid hormone autoantibodies in dogs with clinical signs of hypothyroidism. J Am Vet Med Assoc 2002;220:466–71.
- Dixon RM, Reid SW, Mooney CT. Epidemiological, clinical, haematological and biochemical characteristics of canine hypothyroidism. Vet Rec 1999;145:481–7.
- Panciera DL. Hypothyroidism in dogs: 66 cases (1987–1992). J Am Vet Med Assoc 1994;204:761–7.
- Greco DS, Feldman EC, Peterson ME, et al. Congenital hypothyroid dwarfism in a family of giant schnauzers. J Vet Intern Med 1991;5: 57–65.
- Soler Arias EA, Castillo VA, Garcia JD, et al. Congenital dyshormonogenic hypothyroidism with goiter caused by a sodium/iodide symporter (SLC5A5) mutation in a family of Shih-Tzu dogs. Domest Anim Endocrinol 2018;65:1–8.
- Dodgson SE, Day R, Fyfe JC. Congenital hypothyroidism with goiter in Tenterfield terriers. J Vet Intern Med 2012;26:1350–7.
- Fyfe JC, Kampschmidt K, Dang V, et al. Congenital hypothyroidism with goiter in toy fox terriers. J Vet Intern Med 2003;17:50–7.
- Bellumori TP, Famula TR, Bannasch DL, et al. Prevalence of inherited disorders among mixed-breed and purebred dogs: 27,254 cases (1995–2010). J Am Vet Med Assoc 2013;242:1549–55.
- Vitale CL, Olby NJ. Neurologic dysfunction in hypothyroid, hyperlipidemic Labrador Retrievers. J Vet Intern Med 2007;21:1316–22.
- Corsini A, Faroni E, Lunetta F, et al. Recombinant human thyrotropin stimulation test in 114 dogs with suspected hypothyroidism: a crosssectional study. J Small Anim Pract 2021;62:257–64.
- Dixon RM, Mooney CT. Evaluation of serum free thyroxine and thyrotropin concentrations in the diagnosis of canine hypothyroidism. J Small Anim Pract 1999;40:72–8.
- Boretti FS, Reusch CE. Endogenous TSH in the diagnosis of hypothyroidism in dogs. Schweiz Arch Tierheilkd 2004;146:183–8.
- Diaz Espineira MM, Mol JA, Peeters ME, et al. Assessment of thyroid function in dogs with low plasma thyroxine concentration. J Vet Intern Med 2007;21:25–32.
- Daminet S, Ferguson DC. Influence of drugs on thyroid function in dogs. J Vet Intern Med 2003;17:463–72.
- Kantrowitz LB, Peterson ME, Melian C, Nichols R. Serum total thyroxine, total triiodothyronine, free thyroxine, and thyrotropin concentrations in dogs with nonthyroidal disease. J Am Vet Med Assoc. 2001;219(6): 765–9.
- Shiel RE, Sist M, Nachreiner RF, et al. Assessment of criteria used by veterinary practitioners to diagnose hypothyroidism in sighthounds and investigation of serum thyroid hormone concentrations in healthy Salukis. J Am Vet Med Assoc 2010;236:302–8.
- Hegstad-Davies RL, Torres SM, Sharkey LC, et al. Breed-specific reference intervals for assessing thyroid function in seven dog breeds. J Vet Diagn Invest 2015;27:716–27.
- Krogh AK, Legind P, Kjelgaard-Hansen M, et al. Exercise induced hypercoagulability, increased von Willebrand factor and decreased thyroid hormone concentrations in sled dogs. Acta Vet Scand 2014;56:11.
- Dixon RM, Mooney CT. Canine serum thyroglobulin autoantibodies in health, hypothyroidism and non-thyroidal illness. Res Vet Sci 1999;66: 243–6.
- Mooney CT. Diagnosing hypothyroidism. World Sm Animal Assoc World Congress Proc 2013.
- Shiel RE, Brennan SF, Omodo-Eluk AJ, Mooney CT. Thyroid hormone concentrations in young, healthy, pretrained greyhounds. Vet Rec 2007; 161(18):616–9.
- Muller P, Wolfsheimer K, Taboada J, et al. Effects of long term phenobarbital treatment on the thyroid and adrenal axis and adrenal function tests in dogs. J Vet Intern Med 2008;14(2):157–64.
- Hume KR, Rizzo VL, Cawley JR, Balkman CE. Effects of toceranib phosphate on the hypothalamic-pituitary-thyroid axis in tumor-bearing dogs. J Vet Intern Med. 2018;32(1):377–83.
- Chastain CB, Franklin RT, Ganjam VK, et al. Evaluation of the hypothalamic pituitary-adrenal axis in clinically stressed dogs. J Am Anim Hosp Assoc 1986;22(4):435–42.
- Zerbe CA, Refsal KR, Schall WD, Nachreiner RF, Gossain VV. Adrenal function in 15 dogs with insulin-dependent diabetes mellitus. J Am Vet Med Assoc 1988;193(4):454–6.
- Kaplan AJ, Peterson ME, Kemppainen RJ. Effects of disease on the results of diagnostic tests for use in detecting hyperadrenocorticism in dogs. J Am Vet Med Assoc 1995;207(4):445–51
- May ER, Frank LA, Hnilica KA, et al. Effects of a mock ultrasonographic procedure on cortisol concentrations during low-dose dexamethasone suppression testing in clinically normal adult dogs. J Am Vet Med Assoc 2004;224(6):874–90.
- Dexamethasone. In: Plumb DC. Plumb’s Veterinary Drug Handbook. 9th ed. Stockholm (WI): PharmaVet Inc; 2018:343–348.
- Moore GE, Hoenig M. Duration of pituitary and adrenocortical suppression after long-term administration of anti-inflammatory doses of prednisone in dogs. Am J Vet Res 1992;53(5):716–20.
- Zenoble RD, Kemppainen RJ. Adrenocortical suppression by topically applied corticosteroids in healthy dogs. J Am Vet Med Assoc 1987;191(6): 685–8.
- Kemppainen RJ, Lorenz MD, Thompson FN. Adrenocortical suppression in the dog given a single intramuscular dose of prednisone or triamcinolone acetonide. Am J Vet Res 1982;43(2):204–6.
- Peterson ME, Gilbertson SR, Drucker WD. Plasma cortisol response to exogenous ACTH in 22 dogs with hyperadrenocorticism caused by adrenocortical neoplasia. J Am Vet Med Assoc 1982;180(5):542–4.
- Citron LE, Weinstein NM, Littman MP, Foster JD. Urine cortisolcreatinine and protein-creatinine ratios in urine samples from healthy dogs collected at home and in hospital. J Vet Intern Med 2020;34(2):777–82.
- Behrend E. Canine hyperadrenocorticism. In: Feldman ED, Nelson RW, Reusch CE, et al., eds. Canine and Feline Endocrinology. 4th ed. St. Louis: Elsevier; 2015;422–31.
- Vaughan MA, Feldman EC, Hoar BR, et al. Evaluation of twice-daily, low-dose trilostane treatment administered orally in dogs with naturally occurring hyperadrenocorticism. J Am Vet Med Assoc 2008;232(9):1321–8.
- Arenas C, Melian C, Perez-Alenza MD. Evaluation of 2 trilostane protocols for the treatment of canine pituitary-dependent hyperadrenocorticism: twice daily versus once daily. J Vet Intern Med 2013(27):1478–85.
- Arenas Bermejo C, Perez Alenza D, Garcıa San Jose P, et al. Laboratory assessment of trilostane treatment in dogs with pituitary-dependent hyperadrenocorticism. J Vet Intern Med 2020;34(4):1413–22.
- Vetoryl capsules (trilostane). Package insert. Dechra Ltd; 2015.
- Boretti FS, Holzthum J, Reusch CE, et al. Lack of association between clinical signs and laboratory parameters in dogs with hyperadrenocorticism before and during trilostane treatment. Schweiz Arch Tierheilkd 2016;158(9):631–8.
- Macfarlane L, Parkin T, Ramsey I. Pre-trilostane and three-hour posttrilostane cortisol to monitor trilostane therapy in dogs. Vet Rec 2016; 179(23):597.
- Aldridge C, Behrend EN, Kemppainen RJ, et al. Comparison of 2 doses for ACTH stimulation testing in dogs suspected of or treated for hyperadrenocorticism. J Vet Intern Med 2016;30(5):1637–41.
- Peterson ME, Kintzer PP, Kass PH. Pretreatment clinical and laboratory findings in dogs with hypoadrenocorticism: 225 cases (1979–1993). J Am Vet Med Assoc 1996;208(1):85–91.
- Thompson AL, Scott-Moncrieff JC, Anderson JD. Comparison of classic hypoadrenocorticism with glucocorticoid-deficient hypoadrenocorticism in dogs: 46 cases (1985–2005). J Am Vet Med Assoc 2007; 230(8):1190–4.
- Borin-Crivellenti S, Garabed RB, Moreno-Torres K I, et al. Use of a combination of routine hematologic and biochemical test results in a logistic regression model as a diagnostic aid for the diagnosis of hypoadrenocorticism in dogs. Am J Vet Res 2017;78(10):1171–81.
- Wakayama JA, Furrow E, Merkel LK, et al. A retrospective study of dogs with atypical hypoadrenocorticism: a diagnostic cut off or continuum? J Small Anim Pract 2017;58(7):365–71.
- Seth M, Drobatx KJ, Church DB, et al. White blood cell count and the sodium to potassium ratio to screen for hypoadrenocorticism in dogs. J Vet Intern Med 2011;25:1351–6.
- Adler JA, Drobatz KJ, Hess RS. Abnormalities of serum electrolyte concentrations in dogs with hypoadrenocorticism. J Vet Intern Med 2007;21: 1168–73.
- Baumstark ME, Sieber-Ruckstuhl NS, Muller C, et al. Evaluation of aldosterone concentrations in dogs with hypoadrenocorticism. J Vet Intern Med 2013;28(1):154–9.
- Bovens C, Tennant K, Reeve J, Murphy KF. Basal serum cortisol concentration as a screening test for hypoadrenocorticism in dogs. J Vet Intern Med. 2014;28(5):1541–5.
- Javadi S, Galc S, Boer P, et al. Aldosterone-renin and cortisol-toadrenocorticotropic hormone ratios in healthy dogs and dogs with primary hypoadrenocorticism. J Vet Intern Med 2006;20:556–61.
- Lathan P, Scott-Moncrieff JC, and Wills RW. Use of the cortisol-toACTH ratio for diagnosis of primary hypoadrenocorticism in dogs. J Vet Intern Med 2014;28:1546–50.
- Zycortal suspension (desoxycorticosterone pivalate injectable suspension). Package insert. Dechra Ltd; 2016.
- Moya MV, Refsal KR, Langlois DK. Investigation of the urine cortisol to creatinine ratio for the diagnosis of hypoadrenocorticism in dogs. J Am Vet Med Assoc 2022;260(9):1041–7.
- Del Baldo F, Gerou Ferriani M, Bertazzolo W, Luciani M, Tardo AM, Fracassi F. Urinary cortisol-creatinine ratio in dogs with hypoadrenocorticism. J Vet Intern Med 2022;36(2):482–7.
- Bates JA, Shott S, Schall WD. Lower initial dose desoxycorticosterone pivalate for treatment of canine primary hypoadrenocorticism. Aust Vet J 2013;91(3):77–82.
- Kintzer PP, Peterson ME. Treatment and long-term follow-up of 205 dogs with hypoadrenocorticism. J Vet Intern Med 1997;11(2):43–9.
- Sieber-Ruckstuhl NS, Reusch CE, Hofer-Inteeworn N, et al. Evaluation of a low-dose desoxycorticosterone pivalate treatment protocol for longterm management of dogs with primary hypoadrenocorticism. J Vet Intern Med 2019;33(3):1266–71.
- Vincent AM, Okonkowski LK, Brudvig JM, et al. Low-dose desoxycorticosterone pivalate treatment of hypoadrenocorticism in dogs: a randomized controlled clinical trial. J Vet Intern Med 2021;35(4):1720–8.
- Botsford A, Behrend EN, Kemppainen RJ, et al. Low-dose ACTH stimulation testing in dogs suspected of hypoadrenocorticism. J Vet Intern Med 2018:32:1886–90.
- Frank LA, Oliver J. Comparison of serum cortisol concentrations in clinically normal dogs after administration of freshly reconstituted versus reconstituted and stored frozen cosyntropin. J Am Vet Med Assoc 1998; 212:1569–71
- Asirvatham JR, Moses V, Bjornson L. Errors in potassium measurement: a laboratory perspective for the clinician. N Am J Med Sci 2013;5(4): 255–9.
- Lathan P, Thompson AL. Management of hypoadrenocorticism (Addison’s disease) in dogs. Vet Med (Auckl) 2018;9:1–10.
- Hibbert A, Gruffydd-Jones T, Barrett EL, et al. Feline thyroid carcinoma: diagnosis and response to high-dose radioactive iodine treatment. J Feline Med Surg 2009;11:116–24.
- Peterson ME, Rishniw M. Predicting outcomes in hyperthyroid cats treated with radioiodine. J Vet Intern Med 2022;36(1):49–58.
- Rutland BE, Nachreiner RF, Kruger JM. Optimal testing for thyroid hormone concentration after treatment with methimazole in healthy and hyperthyroid cats. J Vet Intern Med 2009;23:1025–1030.
- Peterson M, Guterl J, Nichols R, et al. Evaluation of serum thyroidstimulating hormone concentration as a diagnostic test for hyperthyroidism in cats. J Vet Intern Med 2015;29:1327–34.
- Peterson ME, Varela FV, Rishniw M, Polzin DJ. Evaluation of serum symmetric dimethylarginine concentration as a marker for masked chronic kidney disease in cats with hyperthyroidism. J Vet Intern Med 2018;32(1):295–304.
- Loftus JP, DeRosa S, Struble AM, et al. One-year study evaluating efficacy of an iodine-restricted diet for the treatment of moderate-to-severe hyperthyroidism in cats. Vet Med (Auckl) 2019;10:9–16.
- Bodey AL, Almond CJ, Holmes MA. Double-blinded randomised placebo-controlled clinical trial of individualised homeopathic treatment of hyperthyroid cats. Vet Rec 2017;180:377.
- Kemppainen RJ, Birchfield JR. Measurement of total thyroxine concentration in serum from dogs and cats by use of various methods. Am J Vet Res 2006;67:259–65.
- Peterson ME. More than just T4. Diagnostic testing for hyperthyroidism in cats. J Feline Med Surg 2013;15:765–77.
- Djajadiningrat-Laanen S, Galac S, Kooistra H. Primary hyperaldosteronism: expanding the diagnostic net. J Feline Med Surg 2011;13(9):641–50.
- Griffin S. Feline abdominal ultrasonography: what’s normal? what’s abnormal? The adrenal glands. J Feline Med Surg 2021;23(1):33–49.
- Kooistra HS. Primary hyperaldosteronism in cats: an underdiagnosed disorder. Vet Clin North Am Small Anim Pract 2020;50(5):1053–63.
- Daminet S. Feline hypothyroidism. In: Mooney CT, Peterson ME, eds. Manual of Canine and Feline Endocrinology. 4th ed. Quedgeley, Gloucester: British Small Animal Veterinary Association; 2012:1–5.
- Peterson ME, Carothers MA, Gamble DA, Rishniw M. Spontaneous primary hypothyroidism in 7 adult cats [published correction appears in J Vet Intern Med 2019;33(2):1111]. J Vet Intern Med 2018;32(6): 1864–73.
- Peterson, ME, Carothers, MA, Gamble, DA, et al. Spontaneous primary hypothyroidism in 7 adult cats. J Vet Intern Med 2018;32:1864–73.
- Fernandez Y, Puig J, Powell R, et al. Prevalence of iatrogenic hypothyroidism in hyperthyroid cats treated with radioiodine using an individualised scoring system. J Feline Med Surg 2019;21(12):1149–56.
- Finch NC, Stallwood J, Tasker S, et al. Thyroid and renal function in cats following low-dose radioiodine (111Mbq) therapy. J Small Anim Pract 2019;60:523–8.
- Boland LA, Barrs VR. Peculiarities of feline hyperadrenocorticism: update on diagnosis and treatment. J Feline Med Surg 2017;19(9):933–47.
- Feldman EC. Hyperadrenocorticism in cats. In: Feldman E, Nelson R, Reusch C, et al., eds. Canine and Feline Endocrinology. 4th ed. St. Louis: Elsevier; 2015:452–84.
- Hoenig M. Feline hyperadrenocorticism–where are we now? J Feline Med Surg 2002;4(3):171–4.
- Acierno MJ, Brown S, Coleman AE, et al. ACVIM consensus statement: guidelines for the identification, evaluation, and management of systemic hypertension in dogs and cats. J Vet Intern Med 2018;32(6):1803–22.